Effects of tensile force on the vascular lumen formation in three-dimensional printed tissue
-
摘要:
目的 探讨牵张力对三维打印组织血管管腔形成的影响。 方法 采用实验研究方法。取2020年9月—2021年5月于苏州瑞华骨科医院妇产科生产的3名健康产妇（年龄22~35岁）弃用的脐带组织，提取人脐静脉内皮细胞（HUVEC）；取2020年9月—2022年9月于苏州瑞华骨科医院手外科行创面修复术的10例男性患者（年龄20~45岁）的废弃正常皮肤组织，提取人皮肤成纤维细胞（HSF）。鉴定2种细胞后取第4~6代细胞进行后续实验。以HUVEC、HSF为种子细胞，以聚己内酯、明胶、透明质酸、纤维蛋白原为支架材料，借助三维生物打印技术，构建三维打印血管化组织。将间距6、10 mm的聚己内酯支架及无聚己内酯支架的打印组织分别设为6 mm间距聚己内酯组、10 mm间距聚己内酯组和无聚己内酯组。培养4 d，取10 mm间距聚己内酯组打印组织，采用细胞活力检测试剂盒检测细胞存活情况并计算细胞存活率。培养14 d，取3组打印组织，肉眼观察组织形变情况；行免疫荧光染色，观察组织中纤丝状肌动蛋白排列，观测组织血管管腔直径、总长度与分支数。设计并打印另带有微弹簧结构的上述3组组织，培养9 d，根据力-位移曲线测量打印组织所受牵张力。以上实验样本数均为3。对数据行单因素方差分析、Tukey检验。 结果 培养4 d，10 mm间距聚己内酯组打印组织细胞存活率为（91.3±2.2）%。培养14 d，无聚己内酯组打印组织形变不明显，6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组打印组织发生明显形变。培养14 d，无聚己内酯组打印组织纤丝状肌动蛋白的排列无特定方向，而6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组打印组织中纤丝状肌动蛋白的排列具有方向性。培养14 d，6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组打印组织血管管腔直径分别为（6.0±1.3）、（10.8±1.3）μm，均明显大于无聚己内酯组的0 μm（ P<0.05），10 mm间距聚己内酯组打印组织血管管腔直径明显大于6 mm间距聚己内酯组（ P<0.05）；6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组打印组织血管总长度、分支数均明显短/少于无聚己内酯组（ P<0.05），10 mm间距聚己内酯组打印组织血管总长度、分支数均明显短/少于6 mm间距聚己内酯组（ P<0.05）。培养9 d，6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组打印组织受到的牵张力分别为（2 340±59）、（4 284±538）μN，均明显大于无聚己内酯组的0 μN（ P<0.05）；10 mm间距聚己内酯组打印组织受到的牵张力明显大于6 mm间距聚己内酯组（ P<0.05）。 结论 三维打印支架结构能对打印组织施加不同大小的牵张力，可通过调控牵张力大小调控打印组织的血管管腔直径。 Abstract:Objective To explore the effects of tensile force on vascular lumen formation in three-dimensional printed tissue. Methods The experimental research method was used. Human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) were extracted from discarded umbilical cord tissue of 3 healthy women (aged 22 to 35 years) who gave birth in the Department of Gynaecology and Obstetrics of Suzhou Ruihua Orthopaedic Hospital from September 2020 to May 2021. Human skin fibroblasts (HSFs) were extracted from discarded normal skin tissue of 10 male patients (aged 20 to 45 years) who underwent wound repair in the Department of Hand Surgery of Suzhou Ruihua Orthopaedic Hospital from September 2020 to September 2022. After identification of the two kinds of cells, the 4 th to 6 th passage of cells were taken for the follow-up experiments. HUVECs and HSFs were used as seed cells, and polycaprolactone, gelatin, hyaluronic acid, and fibrin were used as scaffold materials, and the three-dimensional printed vascularized tissue was created by three-dimensional bioprinting technology. The printed tissue with polycaprolactone scaffold of 6 and 10 mm spacing, and without polycaprolactone scaffold were set as 6 mm spacing polycaprolactone group, 10 mm spacing polycaprolactone group, and non-polycaprolactone group, respectively. After 4 days of culture, the printed tissue in 10 mm spacing polycaprolactone group was selected to detect the cell survival by cell viability detection kit, and the cell survival rate was calculated. After 14 days of culture, the printed tissue in three groups were taken, and the shape change of tissue was observed by naked eyes; immunofluorescence staining was performed to observe the arrangement of filamentous actin, and lumen diameter, total length, and number of branches of vessel in the tissue. The tissue with micro-spring structure in the above-mentioned three groups was designed, printed, and cultured for 9 days, and the tensile force applied in the printed tissue was measured according to the force-displacement curve. The number of samples was all 3 in the above experiments. Data were statistically analyzed with one-way analysis of variance and Tukey test. Results After 4 days of culture, the cell survival rate in printed tissue in 10 mm spacing polycaprolactone group was (91.3±2.2)%. After 14 days of culture, the shape change of printed tissue in non-polycaprolactone group was not obvious, while the shape changes of printed tissue in 6 mm spacing polycaprolactone group and 10 mm spacing polycaprolactone group were obvious. After 14 days of culture, the arrangement of filamentous actin in the printed tissue in non-polycaprolactone group had no specific direction, while the arrangement of filamentous actin in the printed tissue in 6 mm spacing polycaprolactone group and 10 mm spacing polycaprolactone group had a specific direction. After 14 days of culture, The vascular lumen diameters of the printed tissue in 6 mm spacing polycaprolactone group and 10 mm spacing polycaprolactone group were (6.0±1.3) and (10.8±1.3) μm, respectively, which were significantly larger than 0 μm in non-polycaprolactone group ( P<0.05), and the vascular lumen diameter of printed tissue in 10 mm spacing polycaprolactone group was significantly larger than that in 6 mm spacing polycaprolactone group ( P<0.05); the total length and number of branches of blood vessel in the printed tissue in 6 mm spacing polycaprolactone group and 10 mm spacing polycaprolactone group were significantly shorter or less than those in non-polycaprolactone group ( P<0.05), and the total length and number of branches of blood vessel in the printed tissue in 10 mm spacing polycaprolactone group were significantly shorter or less than those in 6 mm spacing polycaprolactone group. After 9 days of culture, the tensile forces applied in the printed tissue in 6 mm spacing polycaprolactone group and 10 mm spacing polycaprolactone group were (2 340±59) and (4 284±538) μN, respectively, which were significantly higher than 0 μN in non-polycaprolactone group ( P<0.05), and the tensile force applied in the printed tissue in 10 mm spacing polycaprolactone group was significantly higher than that in 6 mm spacing polycaprolactone group ( P<0.05). Conclusions The three-dimensional printed scaffold structure can exert different tensile force in the printed tissue, and the vascular lumen diameter of the printed tissue can be regulated by adjusting the tensile force. -
严重烧伤后机体出现持续高代谢反应，且分解代谢变化幅度远超合成代谢，表现为葡萄糖利用障碍、糖酵解和糖异生增强，蛋白分解亢进、呈现蛋白净释放，长链脂肪酸转运受阻、长链脂肪酸β氧化受到部分抑制等，使得血中存在大量葡萄糖、氨基酸和脂肪酸，引起机体代谢紊乱，诱导休克发生［1］。严重烧伤后，大量血浆渗漏到组织间隙或从创面丢失，引起有效循环血量锐减；同时严重烧伤也会损害心肌［2］，导致心脏泵血功能减弱，诱导或加重休克的发生和发展，严重的细胞缺血缺氧损伤进一步加重代谢紊乱。因此，烧伤后高代谢引起的代谢紊乱和有效循环血容量减少导致的烧伤休克互为因果、相互促进，形成恶性循环，从而导致MODS、甚至死亡。现已证实，糖代谢异常是导致烧伤高代谢的首要因素，蛋白质和脂肪代谢模式的改变是为了适应糖代谢的变化。胰岛素作为促合成代谢激素，是体内目前已知的唯一降血糖激素，能够促进组织细胞对糖分的摄取，促进糖原合成、抑制糖原分解，促进脂肪酸的合成与酯化，促进蛋白质合成、抑制蛋白质分解，改善机体营养状况［3］。谷氨酰胺作为一种能源物质，不仅可以为机体蛋白质的合成提供氮源，改善肠黏膜屏障通透性，降低肠源性高代谢，减轻肠道损伤，下调炎症因子水平，抑制氧化应激和调控全身炎症反应；还可以保护心肌细胞，改善心脏泵血功能，最终改善患者的营养状况［4, 5］。因此，本研究团队行前瞻性随机对照试验联合使用胰岛素和谷氨酰胺，期望打断代谢紊乱和烧伤休克的恶性循环，改善患者的营养代谢、炎症反应和心脏泵血功能，提高严重烧伤的救治水平。
1. 对象与方法
本研究属于陆军军医大学（第三军医大学）第一附属医院临床试验项目的子项目，统一通过该医院伦理委员会审批，批件号：2014年科研第（46）号。参与试验的患者自愿签署知情同意书，因病情原因无法亲自签署者由其直系亲属代为签署。
1.1 入选标准
纳入标准：（1）年龄为18~60岁，性别不限。（2）烧伤总面积为30%~70%TBSA，Ⅲ度烧伤面积>20%TBSA。（3）伤后24 h内送至徐州医科大学附属淮海医院接受完整治疗，且入院时创面无感染。
排除标准：（1）入院时已存在严重心血管、肝、肾等器官功能障碍或糖尿病、皮质醇增多症等内分泌系统疾病。（2）入院时合并严重外伤或存在呼吸道烧伤。（3）正在使用谷氨酰胺、胰岛素及胰岛素类似物制剂及其他降糖药，或对试验药物过敏以及存在其他不适合使用脉搏轮廓心输出量（PiCCO）监护仪的情况。（4）试验依从性差或在试验过程中失访以及其他判断为不适合入选者。剔除标准：不愿意继续配合试验或因各种原因住院时间<14 d者。
1.2 临床资料与分组
2017年6月—2019年1月，徐州医科大学附属淮海医院烧伤整形科收治的32例严重烧伤患者符合入选标准，纳入本研究。按照随机数字表法将患者分为单纯胰岛素常规治疗组、单纯胰岛素强化治疗组、胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组，每组8例。4组患者一般资料比较，差异无统计学意义（P>0.05），见表1。
表1 4组严重烧伤患者一般资料比较组别 例数 性别（例） 年龄（岁， 烧伤面积（%TBSA， 烧伤指数（%TBSA， 男 女 总面积 Ⅲ度面积 单纯胰岛素常规治疗组 8 5 3 35±7 48±11 28±7 38±6 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 4 4 36±9 46±13 32±6 40±6 单纯胰岛素强化治疗组 8 3 5 33±11 51±8 33±8 42±7 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 4 4 38±7 50±7 29±7 39±4 F值 — 0.285 0.289 1.259 0.763 P值 >0.05 >0.05 >0.05 >0.05 >0.05 注：“—”表示无此统计量值；TBSA为体表总面积 1.3 治疗方法
常规治疗具体如下。患者入院后按照第三军医大学烧伤补液公式进行个体化液体复苏治疗，复苏成功的标准为患者心率、呼吸、血压等生命体征较为平稳，血液循环稳定，每小时尿量达0.5~1.0 mL/kg；常规给予抗生素预防感染，未达深Ⅱ度的烧伤创面清创后行包扎或半暴露治疗，深Ⅱ度及Ⅲ度烧伤创面在患者入院后3~4 d行切削痂手术治疗；连接PiCCO 2型监护仪（德国Pulsion公司）并校准，校准后监护仪于每日8：00、16：00、24：00自动测量患者各项血流动力学参数；在伤后2 d起给予等氮、等热量的营养支持，按照第三军医大学烧伤热量公式计算所需热量：所需热量（kJ/d）=4 184 kJ×体表面积（m2）+105 kJ×烧伤面积（%TBSA），体表面积（m2）=［身高（m）-0.6］×1.5。结合患者病情选择适合的营养支持方式，在患者能经口补充营养情况下，优先经口补充肠内营养，可通过微量泵经胃管持续恒速泵入，以患者能耐受的摄入量为准，不足热量经肠外途径补充，保证患者每日补充蛋白质2.0 g/kg；非蛋白热量通过给予葡萄糖和脂肪进行补充，非蛋白热氮比为628 kJ∶1 g。伤后3 d进入回吸收期后，按照徐州医科大学附属淮海医院烧伤整形科常规治疗模式进行液体复苏治疗和容量管理。
单纯胰岛素常规治疗组患者在常规治疗基础上，行胰岛素常规治疗。单纯胰岛素强化治疗组患者在常规治疗基础上，行胰岛素强化治疗。胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组患者在单纯胰岛素常规治疗组基础上，给予的蛋白质中，0.3 g/kg通过丙氨酰谷氨酰胺（华瑞制药有限公司）经肠外途径补充，持续14 d以上。胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者在单纯胰岛素强化治疗组基础上另同前补充丙氨酰谷氨酰胺。
4组患者具体血糖控制措施如下。于每日2：00、6：00、三餐后2 h共5个时间点对4组患者进行指尖血糖测定，除三餐后2 h外其余均为空腹血糖。每个时间点连续测定3次血糖，取3次的平均值作为该时间点患者指尖血糖值。单纯胰岛素常规治疗组及胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组患者血糖水平>10.0 mmol/L时，给予皮下注射胰岛素注射液（北京赛升药业股份有限公司）控制患者血糖水平在7.0~10.0 mmol/L。单纯胰岛素强化治疗组及胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组采取更为严格的血糖控制手段使血糖控制在更低范围：于三餐前通过皮下输液泵持续泵入短效胰岛素类似物（赖脯胰岛素注射液，礼来苏州制药有限公司），睡前通过皮下输液泵持续泵入长效胰岛素类似物［甘精胰岛素注射液，赛诺菲安万特（北京）制药有限公司］；每日所用上述胰岛素类似物起始总量为0.4 U·kg-1·d-1，三餐前短效胰岛素占起始总量的70%~80%（每餐餐前胰岛素用量在前述基础上再分配成三等份），睡前长效胰岛素占起始总量的20%~30%。在此基础上，若患者初始血糖>10.0 mmol/L时，调整皮下输液泵输液速率，以2 U/h的起始量持续泵入胰岛素注射液；若患者初始血糖>12.0 mmol/L，则以3 U/h的起始量持续泵入胰岛素注射液；若患者初始血糖>20.0 mmol/L或血糖测量仪显示“HIGH”，则先快速泵入胰岛素注射液5 U，再以3~5 U/h的速率持续泵入胰岛素注射液。调整泵速以维持患者2：00和6：00空腹指尖血糖4.4~6.1 mmol/L、餐后2 h指尖血糖<8.0 mmol/L。4组患者血糖达到目标范围后，减少或停止使用胰岛素或胰岛素类似物；同时警惕低血糖的发生，当患者血糖<3.8 mmol/L时，补充适量葡萄糖注射液，复测指尖血糖达4.4~6.1 mmol/L后停止输注。
1.4 检测指标
（1）分别于治疗1、3、7、14 d 8：00抽取4组患者静脉血5 mL，送至徐州医科大学附属淮海医院检验科检测血糖、白蛋白、前白蛋白、白细胞计数、降钙素原和C反应蛋白（CRP）。（2）每日取3次PiCCO监测参数的平均值为最终结果。统计4组患者治疗1、3、7 d心脏指数、每搏量指数（SVI）、全心舒张末期容积指数（GEDVI）、外周血管阻力指数（SVRI）、血管外肺水指数（EVLWI）、肺血管通透性指数（PVPI）。
1.5 统计学处理
采用SPSS 19.0统计软件对数据进行分析，计数资料数据以频数表示，组间比较行Fisher确切概率法检验（软件自动略去该统计量值）；计量资料数据均符合正态分布，以
2. 结果
4组患者均平稳度过休克期，未出现休克延迟复苏情况，病程中未出现明显的感染及脏器功能不全等并发症，均顺利完成研究，无退出病例。
2.1 血糖、白蛋白与前白蛋白
4组患者治疗1 d血糖均高于正常值，治疗3~14 d均有所降低。治疗3、7、14 d，单纯胰岛素强化治疗组和胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者血糖均明显低于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表2。
表2 4组严重烧伤患者治疗各时间点血糖比较（mmol/L，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 9.6±1.2 9.1±0.5 8.4±0.9 7.4±1.1 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 8.5±0.8 8.5±0.6 7.1±1.2 6.0±0.9 单纯胰岛素强化治疗组 8 9.3±0.5 5.9±1.3a 5.8±0.6a 5.5±0.5a 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 9.2±0.9 5.9±1.1a 5.6±1.1a 5.2±0.8a F值 3.137 34.660 18.507 15.933 P值 <0.05 <0.01 <0.01 <0.01 注：成人空腹血糖正常值为3.9~6.1 mmol/L；处理因素主效应，F=49.598，P<0.01；时间因素主效应，F=62.512，P<0.01；两者交互作用，F=5.119，P<0.01；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 4组患者治疗1 d白蛋白均低于正常值；治疗3~14 d，4组患者白蛋白有所升高。与单纯胰岛素常规治疗组比，胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组、单纯胰岛素强化治疗组、胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者治疗7、14 d白蛋白明显升高（P<0.05）；与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组比，胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组、单纯胰岛素强化治疗组患者治疗14 d白蛋白明显降低（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。治疗1~14 d，4组患者前白蛋白均先降低后升高。与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组比，单纯胰岛素常规治疗组、胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组和单纯胰岛素强化治疗组患者治疗1、7、14 d前白蛋白明显降低（P<0.05）；与单纯胰岛素常规治疗组比，胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组和单纯胰岛素强化治疗组患者治疗7、14 d前白蛋白明显升高（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表3、4。
表3 4组严重烧伤患者治疗各时间点白蛋白比较（g/L，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 23.6± 22.4± 24.2± 25.3± 5.4 5.6 7.3 3.0 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 24.2± 23.2± 28.4± 30.4± 7.2 6.5 3.4a 3.6ab 单纯胰岛素强化治疗组 8 23.8± 23.2± 29.1± 31.0± 6.3 8.6 1.6a 2.7ab 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 24.0± 24.8± 31.4± 36.8± 4.1 5.4 2.6a 2.9a F值 0.014 0.169 3.833 19.069 P值 <0.01 <0.01 <0.05 <0.01 注：白蛋白正常值>35 g/L；处理因素主效应，F=5.794，P<0.01；时间因素主效应，F=39.626，P<0.01；两者交互作用，F=3.636，P<0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05；与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组比较，bP<0.05 表4 4组严重烧伤患者治疗各时间点前白蛋白比较（mg/L，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 154±10a 113±15 82±9a 108±8a 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 151±15a 118±14 104±13ab 159±24ab 单纯胰岛素强化治疗组 8 155±24a 116±16 108±16ab 173±43ab 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 157±20 141±17 129±20 170±58 F值 0.133 5.292 12.632 18.977 P值 <0.01 <0.05 <0.01 <0.01 注：前白蛋白正常值为280~360 mg/L；处理因素主效应，F=14.586，P<0.01；时间因素主效应，F=2.388，P>0.05；两者交互作用，F=17.254，P<0.01；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组比较，aP<0.05；与单纯胰岛素常规治疗组比较，bP<0.05 2.2 白细胞计数、降钙素原、CRP
4组患者治疗1 d白细胞计数、降钙素原、CRP均高于正常值；治疗3~14 d，4组患者白细胞计数、降钙素原、CRP有降低，但仍高于正常值；4组患者治疗1、3、7、14 d白细胞计数、降钙素原、CRP组间两两比较差异均无统计学意义（P>0.05）。见表5, 6, 7。
表5 4组严重烧伤患者治疗各时间点白细胞计数比较（×109/L，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 20.9± 13.4± 13.3± 13.1± 2.8 1.1 0.9 2.6 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 20.2± 13.9± 13.2± 12.2± 3.2 2.2 0.7 0.6 单纯胰岛素强化治疗组 8 18.8± 12.6± 14.0± 12.9± 7.4 2.0 1.6 1.5 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 20.2± 12.3± 12.7± 13.0± 5.6 1.0 1.9 1.4 F值 0.534 1.148 0.793 0.825 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 注：成人白细胞计数正常值为（4.0~10.0）×109/L；处理因素主效应，F=1.593，P>0.05；时间因素主效应，F=47.331，P<0.01；两者交互作用，F=0.173，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得 表6 4组严重烧伤患者治疗各时间点降钙素原比较（ng/mL，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 6.00± 3.67± 1.07± 0.66± 0.56 0.31 0.16 0.32 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 6.12± 3.81± 0.96± 0.94± 1.38 0.41 0.17 0.15 单纯胰岛素强化治疗组 8 5.91± 3.62± 0.94± 0.84± 0.90 0.26 0.15 0.24 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 5.72± 3.34± 0.99± 0.92± 0.67 0.41 0.13 0.32 F值 0.262 2.557 1.057 2.012 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 注：降钙素原正常值为<0.5 ng/mL；处理因素主效应，F=0.318，P>0.05；时间因素主效应，F=998.094，P<0.01；两者交互作用，F=1.018，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得 表7 4组严重烧伤患者治疗各时间点C反应蛋白比较（mg/L，组别 例数 1 d 3 d 7 d 14 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 91±34 78±8 71±18 43±10 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 81±23 77±12 65±15 38±14 单纯胰岛素强化治疗组 8 72±23 84±11 75±16 49±20 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 68±15 77±10 70±13 50±25 F值 1.433 0.780 0.508 0.700 P值 <0.01 <0.01 <0.01 <0.01 注：C反应蛋白正常值为0~5 mg/L；处理因素主效应，F=0.806，P>0.05；时间因素主效应，F=40.417，P<0.01；两者交互作用，F=1.748，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得 2.3 心脏指数
4组患者治疗1 d心脏指数均处于较低水平，治疗3~7 d均逐渐上升。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者心脏指数均明显高于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表8。
表8 4组严重烧伤患者治疗各时间点心脏指数比较（L·min-1·m-2，组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 3.24±0.43 4.67±0.49 6.21±0.68 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 3.13±0.16 5.39±1.14 6.39±1.12 单纯胰岛素强化治疗组 8 3.28±0.33 5.21±0.41 6.32±0.58 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 3.49±0.24 5.82±0.44a 6.52±0.43a F值 1.964 3.799 0.275 P值 <0.01 <0.01 <0.01 注：心脏指数正常值为3.0~5.0 L·min-1·m-2；处理因素主效应，F=3.560，P<0.05；时间因素主效应，F=207.235，P<0.01；两者交互作用，F=1.067，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 2.4 SVI
4组患者治疗1 d SVI均低于正常值，治疗3~7 d均逐渐上升。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者SVI均明显高于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表9。
表9 4组严重烧伤患者治疗各时间点每搏量指数比较（mL/m2，组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 32.1±2.3 43.3±7.9 54.8±3.9 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 34.8±7.6 51.2±13.2 55.3±2.6 单纯胰岛素强化治疗组 8 37.1±6.2 45.3±6.7 54.9±3.2 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 32.1±5.2 55.6±5.3a 61.1±1.5a F值 1.462 3.285 8.752 P值 <0.01 <0.05 <0.01 注：每搏量指数正常值为40~60 mL/m2；处理因素主效应，F=4.134，P<0.01；时间因素主效应，F=106.187，P<0.01；两者交互作用，F=2.717，P<0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 2.5 GEDVI
4组患者治疗1 d GEDVI均低于正常低值，治疗3~7 d均逐渐上升并最终超过正常值。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者GEDVI均明显高于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表10。
表10 4组严重烧伤患者治疗各时间点全心舒张末期容积指数比较（mL/m2，组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 618±175 733±124 812±103 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 671±181 803±69 850±121 单纯胰岛素强化治疗组 8 640±192 768±101 841±135 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 651±125 872±77a 845±112a F值 0.076 3.122 0.168 P值 <0.01 <0.05 <0.01 注：全心舒张末期容积指数正常值为600~800 mL/m2；处理因素主效应，F=1.084，P<0.05；时间因素主效应，F=21.610，P<0.01；两者交互作用，F=0.401，P<0.01；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 2.6 SVRI
4组患者治疗1 d SVRI均处于正常高值，治疗3~7 d均逐渐下降并最终低于正常值。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者SVRI均明显高于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表11。
表11 4组严重烧伤患者治疗各时间点外周血管阻力指数比较（dyn·s·cm-5·m2，组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 2 187±144 1 528±191 988±145 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 2 342±344 1 592±144 1 102±113 单纯胰岛素强化治疗组 8 2 204±223 1 449±133 1 125±103 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 2 201±179 1 783±253a 1 201±141a F值 0.762 4.660 3.850 P值 <0.01 <0.05 <0.05 注：外周血管阻力指数正常值为1 700~2 400 dyn·s·cm-5·m2；处理因素主效应，F=3.776，P<0.05；时间因素主效应，F=290.214，P<0.01；两者交互作用，F=1.872，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 2.7 EVLWI
4组患者治疗1 d EVLWI处于正常高值。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者EVLWI均明显低于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表12。
表12 4组严重烧伤患者治疗各时间点血管外肺水指数比较（mL/kg，组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 6.6±0.5 7.2±0.6 7.8±0.5 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 6.3±0.7 6.4±1.3 7.2±0.9 单纯胰岛素强化治疗组 8 6.3±0.4 6.7±0.8 7.4±0.6 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 6.4±0.6 5.7±0.8a 6.6±0.5a F值 0.370 3.998 4.583 P值 <0.05 <0.05 <0.05 注：血管外肺水指数正常值为3~7 mL/kg；处理因素主效应，F=7.278，P<0.01；时间因素主效应，F=13.412，P<0.01；两者交互作用，F=1.418，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 2.8 PVPI
4组患者治疗1~7 d PVPI均处于正常范围并逐渐下降。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者PVPI均明显低于单纯胰岛素常规治疗组（P<0.05）；其余组间两两比较，差异均无统计学意义（P>0.05）。见表13。
表13 4组严重烧伤患者治疗各时间点肺血管通透性指数比较（组别 例数 1 d 3 d 7 d 单纯胰岛素常规治疗组 8 1.68±0.19 1.62±0.21 1.31±0.22 胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组 8 1.63±0.10 1.51±0.17 1.19±0.17 单纯胰岛素强化治疗组 8 1.57±0.21 1.49±0.11 1.17±0.15 胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组 8 1.58±0.14 1.31±0.09a 0.91±0.18a F值 0.875 5.328 6.685 P值 <0.05 <0.05 <0.05 注：肺血管通透性指数正常值为1.0~3.0；处理因素主效应，F=10.508，P<0.01；时间因素主效应，F=67.452，P<0.01；两者交互作用，F=1.382，P>0.05；F值、P值为组间各时间点总体比较所得；与单纯胰岛素常规治疗组比较，aP<0.05 3. 讨论
严重烧伤诱发的炎症反应、代谢亢进、肌肉消瘦和胰岛素抵抗等都是标志性的病理生理反应，这些代谢变化在烧伤后即可出现，数年内仍持续存在［6］。彭曦［7］认为蛋白质能量营养不良能使机体免疫功能下降、组织和器官水肿、血液运送氧能力下降、发生MODS、增加患者病死率。应激性高血糖是重症烧伤患者普遍存在的一种现象，并成为独立危险因素，直接影响患者的预后［8］。烧伤应激性高血糖的诊断标准和理想的血糖控制目标目前仍未达成共识，部分学者提出在排除糖尿病的基础上，由烧伤作为应激原引起随机血糖升高超过11.1 mmol/L可考虑诊断为应激性高血糖［9］。有研究显示，使用相关胰岛素强化治疗控制危重症患者血糖在正常生理范围内可有效减少患者病死率及并发症发生率［10］。
本课题组通过胰岛素强化治疗更为严格地控制单纯胰岛素强化治疗组和胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者血糖，使患者指尖血糖控制在空腹4.4~6.1 mmol/L、餐后2 h<8.0 mmol/L；谷氨酰胺则通过丙氨酰谷氨酰胺补充。结果提示4组患者治疗1 d血糖均高于正常值，单纯胰岛素常规治疗组患者治疗1~14 d血糖基本可以控制在10.0 mol/L以下；治疗3、7、14 d，单纯胰岛素强化治疗组和胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者血糖均明显低于单纯胰岛素常规治疗组。说明在使用相关胰岛素强化治疗后，患者血糖得到了更好的控制，血糖降低幅度更大。与单纯胰岛素强化治疗组比，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者血糖更低，但差异无统计学意义（P>0.05），因此尚不能证明谷氨酰胺与胰岛素强化治疗联用对降低严重烧伤后高血糖有协同效应。
白蛋白与前白蛋白是反映机体营养代谢的常用指标［11］。本研究中4组患者治疗1 d白蛋白和前白蛋白均低于正常值；治疗3~14 d，4组患者白蛋白有所升高、前白蛋白先降低再升高。该变化早期是由于烧伤后血管通透性增高、血浆蛋白大量丢失导致，后期则和烧伤后持续高代谢，蛋白合成减少、分解增加有关［12］。治疗3 d，多数患者白蛋白降至最低；治疗7 d，4组患者前白蛋白均降至最低。随着治疗的进行与病情的好转，患者的血管通透性恢复，营养代谢有所改善，治疗7、14 d，患者白蛋白与前白蛋白分别开始升高。本研究显示，与单纯胰岛素常规治疗组比，胰岛素强化治疗＋谷氨酰胺组患者治疗7、14 d白蛋白、前白蛋白升高；与胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组比，胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组、单纯胰岛素强化治疗组患者治疗14 d白蛋白降低，单纯胰岛素常规治疗组、胰岛素常规治疗+谷氨酰胺组和单纯胰岛素强化治疗组患者治疗1、7、14 d前白蛋白明显降低。分析这些营养指标的变化，本课题组认为是在联合使用胰岛素与谷氨酰胺治疗时，胰岛素作为合成代谢激素，也促进了体内白蛋白与前白蛋白的合成，抑制体内白蛋白和前白蛋白的分解与消耗［13］；谷氨酰胺作为条件必需氨基酸，在烧伤时体内含量锐减，通过给予外源性谷氨酰胺补充了机体所需，从而减少了内源性营养底物的消耗［14, 15］。二者联合使用，对改善机体营养代谢水平发挥了协同作用。
感染也是烧伤后的常见并发症之一。临床上严重烧伤患者病程长、病情复杂，可进一步发展为脓毒症、脓毒症休克、SIRS甚至MODS等［16］，因此烧伤后对患者的感染情况进行尽早干预具有重要意义。本研究中4组患者在治疗1 d白细胞计数、降钙素原、CRP均高于正常值，提示烧伤后机体并发全身感染。治疗3~14 d，4组患者白细胞计数、降钙素原、CRP虽有下降，但仍高于正常值，且组间两两比较差异均无统计学意义（P>0.05），尚无法证明谷氨酰胺以及胰岛素强化治疗对严重烧伤患者伤后机体炎症反应有控制作用。这有可能是由于纳入本次研究的炎症反应观测指标不够全面或样本量过小造成功效不足，有待进一步研究。
烧伤引起的休克同样应当引起重视。研究显示，烧伤总面积超过15%TBSA的成年烧伤患者就有休克风险［17］。烧伤后由于热力的直接作用，创面内蛋白凝固变性，创面周围血管扩张，致使血管通透性增加，大量水分流失到血管外造成机体有效循环血量不足，组织器官灌注不足，组织细胞无氧酵解造成乳酸堆积，如不能及时有效地改善缺血缺氧会导致一系列并发症［18］。除了有效循环血容量的明显变化，研究显示在严重烧伤后半小时内即可造成心肌损害［19］，心肌细胞血流灌注减少，心肌缺血缺氧损伤，造成心肌自噬或凋亡，心脏泵血功能减弱。心脏作为循环动力器官，心肌损伤造成的心输出量减少进一步加重了休克［20］。因此，在纠正休克的同时需要缓解心肌损伤，改善心功能。作为三大营养素的促合成激素，已有研究表明胰岛素具有减少血中游离氨基酸和脂肪酸的作用，从而改善微循环，继而改善液体复苏的效果［21］。此外，有研究表明谷氨酰胺可改善心肌缺血再灌注损伤，保护心肌，对心脏血流动力学也有一定改善作用［22］。
及时有效的液体复苏是烧伤休克救治的关键［23］。然而，进行液体复苏需要注意补液量的问题。补液不足，液体过少，难以恢复有效循环血量，无法改善组织器官灌注，休克无法得到纠正；补液过多，液体负荷过重，可导致心力衰竭与肺水肿等并发症的发生。单纯依赖烧伤补液公式无法及时准确评估患者血流动力学恢复情况，临床上常通过观察患者心率、血压、尿量及精神状况、肢端温度来评估。然而，这些指标通常都滞后于有效循环血量的变化，因此不能及时准确反映机体循环恢复的真实情况［24］。随着对烧伤休克的深入研究与微创技术的发展与应用，目前PiCCO监测仪已应用于临床危重症患者的监护管理［25］。PiCCO监护仪可在床旁监测患者心脏泵血功能、前后负荷、EVLWI等，通过这些参数准确反映患者血流动力学变化情况，在危重患者的液体管理与监测中发挥越来越重要的作用［26］。PiCCO同样已被用于严重烧伤患者的容量管理。因此，本研究使用PiCCO监护仪检测胰岛素强化治疗联合谷氨酰胺对严重烧伤患者血流动力学的影响。
通过PiCCO监测仪观察到，严重烧伤患者入院24 h内，正处于休克期，反映患者心功能的相关参数，如心脏指数和SVI以及反映前负荷的参数GEDVI均处于较低水平，这是患者烧伤后有效循环血容量减少所致。在治疗3 d患者逐渐进入回吸收期，通过有效的补液，有效循环血量逐渐恢复，患者的心脏指数也随之恢复正常并趋于稳定。在本研究中，治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者心脏指数、SVI均高于单纯胰岛素常规治疗组，可能机制是谷氨酰胺发挥了保护心肌、改善心功能、增加心输出量的作用。Zhang等［27］研究显示，谷氨酰胺可以转化为谷胱甘肽，有助于体内谷胱甘肽合成，为心肌细胞提供养分，减少氧自由基对心肌的损伤，抑制细胞凋亡，从而保护心肌细胞，改善心功能。胰岛素强化治疗则通过降低烧伤后应激性高血糖，保护心肌细胞以及血管内皮细胞免受高血糖损伤，抑制过度炎症反应，进而改善患者心血管功能［28］。
由于血容量恢复，大量组织间液从组织间隙重新进入血循环中，导致回心血量增加，使得心脏前负荷也随之上升。GEDVI可作为反映心脏前负荷的指标。本研究显示，治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者GEDVI均明显高于单纯胰岛素常规治疗组，这和胰岛素强化治疗与谷氨酰胺联合使用可改善严重烧伤患者心血管功能，致使患者回心血量增加有关。需要注意的是，如果此时没有及时减少补液量，容易造成容量负荷过重导致肺水肿等并发症的发生［29］。SVRI可作为反映心脏后负荷的指标，本研究同时观察到4组患者SVRI在治疗1 d处于正常高值，并随着时间的推移逐步降低，这是由于烧伤后早期血容量相对减少，机体通过加压反射、应激反应释放大量血管活性物质等代偿机制维持血压保证灌注所致［30］。胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者治疗3、7 d SVRI明显高于单纯胰岛素常规治疗组，这是由于谷氨酰胺可阻止细胞储备中L-精氨酸的释放，从而增强机体对血管内皮素的反应，血管收缩得以加强［31］。已有研究证明血液中高胰岛素浓度可通过交感神经介导的血管收缩增加、激活MAPK/内皮素1信号通路等机制刺激血管收缩［32, 33］，本研究中应用谷氨酰胺联合胰岛素强化治疗以补充外源性胰岛素，最终使得患者外周血管收缩得到进一步加强。
EVLWI可用来评估患者肺水肿程度，也可作为严重烧伤患者早期发生ARDS的独立预后因素［34］，近年有研究表明烧伤总面积是烧伤患者EVLWI异常的独立危险因素［35］。烧伤后EVLWI持续升高，可能与休克期体液渗出及后期液体复苏有关［36］。PVPI可用来反映肺血管通透性，从而评估严重烧伤患者肺水肿的病因。治疗1~7 d，4组患者PVPI均逐步降低，说明患者肺血管通透性逐步降低。通常在伴脓毒症时肺血管通透性升高，此时PVPI会高于正常值，并伴EVLWI升高；而容量负荷过重、血管静水压增高时，PVPI处于正常范围伴EVLWI升高。在本研究中，单纯胰岛素常规治疗组患者治疗1~7 d EVLWI持续升高；PVPI在治疗1 d即达峰值，随后缓慢下降；而治疗1 d心功能指标基本正常，这可能与肺部局部炎症、回吸收期后有效循环血量恢复有关。治疗3、7 d，胰岛素强化治疗+谷氨酰胺组患者EVLWI、PVPI明显低于单纯胰岛素常规治疗组，也是由于胰岛素与谷氨酰胺联合治疗可改善肺局部炎症。
从患者整体情况来看，相比单纯胰岛素常规治疗、单纯胰岛素强化治疗和胰岛素常规治疗联合谷氨酰胺，胰岛素强化治疗联合谷氨酰胺能更好地降低严重烧伤患者的血糖，升高白蛋白和前白蛋白，改善心脏指数、SVI、GEDVI、SVRI、EVLWI和PVPI等血流动力学指标。提示胰岛素和谷氨酰胺可能通过某种协同作用共同改善患者的营养代谢和心脏泵血功能，中断代谢紊乱和烧伤休克的恶性循环，使休克期度过更加平稳，进一步提高严重烧伤的救治水平。
本研究受限于现有样本量及评价指标，且对其他影响因素的控制不够全面，所得结果存在一定偏倚，本研究结论有待试验设计更为完善、更具科学性的研究进一步验证。
顾诚：酝酿和设计研究、采集数据、分析/解释数据、起草文章、统计分析；曹高标、张志强、俞程浩、左睿、徐驰：采集数据、分析/解释数据；乐颖影：酝酿和设计研究、对文章内容作批评性审阅；巨积辉、侯瑞兴：行政、技术或材料支持；张广亮：酝酿和设计研究、分析/解释数据、对文章内容作批评性审阅、经费支持所有作者均声明不存在利益冲突 -
参考文献
(31) [1] StinnerDJ,EdwardsD.Surgical management of musculoskeletal trauma[J].Surg Clin North Am,2017,97(5):1119-1131.DOI: 10.1016/j.suc.2017.06.005. [2] XuJ,YinL,CaoS,et al.Application of WALANT technique for repairing finger skin defect with a random skin flap[J].J Orthop Surg Res,2021,16(1):164.DOI: 10.1186/s13018-021-02319-3. [3] 周荣,巨积辉,唐林峰,等.带感觉神经的股前外侧穿支皮瓣修复足底皮肤软组织缺损的临床效果[J].中华烧伤杂志,2021,37(5):453-459.DOI: 10.3760/cma.j.cn501120-20200309-00136. [4] 黄广涛,魏在荣,黄丽,等.二纵三横法在胸背动脉穿支皮瓣穿支定位及深度创面修复中的临床应用效果[J].中华烧伤与创面修复杂志,2022,38(2):165-169.DOI: 10.3760/cma.j.cn501120-20201207-00519. [5] 戚建武,陈邵,孙斌鸿,等.游离背阔肌肌皮瓣联合人工真皮及刃厚皮治疗下肢脱套伤的临床效果[J].中华烧伤与创面修复杂志,2022,38(4):347-353.DOI: 10.3760/cma.j.cn501120-20210421-00145. [6] HerskovitzI,HughesOB,MacquhaeF,et al.Epidermal skin grafting[J].Int Wound J,2016,13 Suppl 3:S52-56.DOI: 10.1111/iwj.12631. [7] 肖仕初,郑勇军.组织工程皮肤现状与挑战[J].中华烧伤杂志,2020,36(3):166-170.DOI: 10.3760/cma.j.cn501120-20191202-00449. [8] De DeckerI, HoeksemaH, VerbelenJ, et al. A single-stage bilayered skin reconstruction using Glyaderm® as an acellular dermal regeneration template results in improved scar quality: an intra-individual randomized controlled trial[J/OL]. Burns Trauma,2023,11:tkad015[2023-05-24].https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37143955/.DOI: 10.1093/burnst/tkad015. [9] VigK,ChaudhariA,TripathiS,et al.Advances in skin regeneration using tissue engineering[J].Int J Mol Sci,2017,18(4):789. DOI: 10.3390/ijms18040789. [10] 王晓静,王国伟,惠光艳,等.组织工程化皮肤:从形态和功能安全替代的前景[J].中国组织工程研究,2017,21(16):2600-2605.DOI: 10.3969/j.issn.2095-4344.2017.16.024. [11] DattaP,AyanB,OzbolatIT.Bioprinting for vascular and vascularized tissue biofabrication[J].Acta Biomater,2017,51:1-20.DOI: 10.1016/j.actbio.2017.01.035. [12] DimitrievskaS,NiklasonLE.Historical perspective and future direction of blood vessel developments[J].Cold Spring Harb Perspect Med,2018,8(2):a025742. DOI: 10.1101/cshperspect.a025742. [13] RosenfeldD,LandauS,ShandalovY,et al.Morphogenesis of 3D vascular networks is regulated by tensile forces[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2016,113(12):3215-3220.DOI: 10.1073/pnas.1522273113. [14] WenZ,ZhouH,ZhouJ,et al.Quantitative evaluation of mechanical stimulation for tissue-engineered blood vessels[J].Tissue Eng Part C Methods,2021,27(5):337-347.DOI: 10.1089/ten.TEC.2021.0007. [15] WangX,LiX,LiJ,et al.Mechanical loading stimulates bone angiogenesis through enhancing type H vessel formation and downregulating exosomal miR-214-3p from bone marrow-derived mesenchymal stem cells[J].FASEB J,2021,35(1):e21150.DOI: 10.1096/fj.202001080RR. [16] ZhangG, CaoG, GuC, et al. Regulation of vascular branch formation in 3D bioprinted tissues using confining force[J]. Appl Mater Today, 2022, 26:101240.DOI: 10.1016/j.apmt.2021.101240. [17] 曹高标 CDC42在牵张力调控3D打印组织血管分支形成中的作用研究 扬州 扬州大学 2022 DOI: 10.27441/d.cnki.gyzdu.2022.001640 曹高标.CDC42在牵张力调控3D打印组织血管分支形成中的作用研究[D].扬州:扬州大学,2022.DOI:10.27441/d.cnki.gyzdu.2022.001640.
[18] 林苗远,李豫皖,刘毅,等.组织工程皮肤的研究热点及应用价值[J].中国组织工程研究,2022,26(1):153-159. [19] MeuliM,Hartmann-FritschF,HügingM,et al.A cultured autologous dermo-epidermal skin substitute for full-thickness skin defects: a phase I, open, prospective clinical trial in children[J].Plast Reconstr Surg,2019,144(1):188-198.DOI: 10.1097/PRS.0000000000005746. [20] AugerFA,GibotL,LacroixD.The pivotal role of vascularization in tissue engineering[J].Annu Rev Biomed Eng,2013,15:177-200.DOI: 10.1146/annurev-bioeng-071812-152428. [21] Ben-ShaulS,LandauS,MerdlerU,et al.Mature vessel networks in engineered tissue promote graft-host anastomosis and prevent graft thrombosis[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2019,116(8):2955-2960.DOI: 10.1073/pnas.1814238116. [22] HomaeigoharS, LiM, BoccacciniAR. Bioactive glass-based fibrous wound dressings[J/OL]. Burns Trauma,2022,10:tkac038[2023-05-24].https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36196303/. DOI: 10.1093/burnst/tkac038. [23] DimopoulosA,MarkatosDN,MitropoulouA,et al.A novel polymeric fibrous microstructured biodegradable small-caliber tubular scaffold for cardiovascular tissue engineering[J].J Mater Sci Mater Med,2021,32(2):21.DOI: 10.1007/s10856-021-06490-1. [24] KoleskyDB,HomanKA,Skylar-ScottMA,et al.Three-dimensional bioprinting of thick vascularized tissues[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2016,113(12):3179-3184.DOI: 10.1073/pnas.1521342113. [25] 李惠杰,徐雷,钟葳珍,等.光固化3D打印药物制剂技术研究进展[J].中国药学杂志,2021,56(15):1189-1195.DOI: 10.11669/cpj.2021.15.001. [26] ChenJ,AlexanderGC,BobbaPS,et al.Recent progress in vascular tissue-engineered blood vessels[J].Adv Exp Med Biol,2018,1064:123-144.DOI: 10.1007/978-981-13-0445-3_8. [27] VukicevicM,MosadeghB,MinJK,et al.Cardiac 3D printing and its future directions[J].JACC Cardiovasc Imaging,2017,10(2):171-184.DOI: 10.1016/j.jcmg.2016.12.001. [28] ZhangG,VarkeyM,WangZ,et al.ECM concentration and cell-mediated traction forces play a role in vascular network assembly in 3D bioprinted tissue[J].Biotechnol Bioeng,2020,117(4):1148-1158.DOI: 10.1002/bit.27250. [29] ZhangG,WangZ,HanF,et al.Mechano-regulation of vascular network formation without branches in 3D bioprinted cell-laden hydrogel constructs[J].Biotechnol Bioeng,2021,118(10):3787-3798.DOI: 10.1002/bit.27854. [30] BoardmanR,PangV,MalhiN,et al.Activation of Notch signaling by soluble Dll4 decreases vascular permeability via a cAMP/PKA-dependent pathway[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2019,316(5):H1065-H1075.DOI: 10.1152/ajpheart.00610.2018. [31] FouilladeC,Monet-LeprêtreM,Baron-MenguyC,et al.Notch signalling in smooth muscle cells during development and disease[J].Cardiovasc Res,2012,95(2):138-146.DOI: 10.1093/cvr/cvs019. -
1 10 mm间距聚己内酯组打印组织三维生物打印主要过程。1A.打印2条聚己内酯支架；1B.打印明胶层后；1C.打印含HUVEC和HSF的水凝胶后；1D.再次打印2条聚己内酯支架后
注：HUVEC为人脐静脉内皮细胞，HSF为人皮肤成纤维细胞
2 10 mm间距聚己内酯组打印组织培养4 d HUVEC和HSF存活情况 倒置荧光显微镜×100。2A、2B.分别为活细胞、死细胞染色；2C.活细胞与死细胞染色重叠图片，细胞存活情况良好
注：HUVEC为人脐静脉内皮细胞，HSF为人皮肤成纤维细胞；活细胞染色为绿色，死细胞染色为红色
3 3组打印组织培养14 d形变情况。3A、3B、3C.分别为无聚己内酯组、6 mm间距聚己内酯组和10 mm间距聚己内酯组，图3A打印组织形变不明显，图3B、3C打印组织发生明显形变
4 3组打印组织培养14 d纤丝状肌动蛋白的排列情况 四甲基异硫氰酸罗丹明-鬼笔环肽-4′，6-二脒基-2-苯基吲哚×100。4A.无聚己内酯组打印组织纤丝状肌动蛋白排列无特定方向；4B、4C.分别为6 mm间距聚己内酯组、10 mm间距聚己内酯组打印组织，纤丝状肌动蛋白排列均具有方向性
注：纤丝状肌动蛋白阳性染色为红色，细胞核染色为蓝色
-
下载:
下载:
计量
- 文章访问数: 2645
- HTML全文浏览量: 101
- PDF下载量: 11
- 被引次数: 0
