Research advances on the application of recombinant human collagen biomaterials in the field of tissue engineering
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摘要: 重大创烧伤等引起的大面积组织和器官缺损是临床上常见的问题。重组人胶原蛋白生物材料具有生物相容性良好、可定制化、氨基酸序列稳定、免疫原性低以及可生物降解等诸多优点,被广泛用于组织工程领域,具有广阔的临床应用前景。该文简要总结了重组人胶原蛋白生物材料的设计与制备方式、加工技术及其在组织工程领域的应用情况及最新研究进展。Abstract: Extensive tissue and organ defects caused by major trauma and burns are common problems in clinical practice. Recombinant human collagen biomaterials, with advantages including impeccable biocompatibility, customization, stable amino acid sequence, low immunogenicity, and inherent biodegradation, have been widely used in the field of tissue engineering and have broad clinical application prospects. This paper briefly summarizes the design and preparation methods, processing techniques of recombinant human collagen biomaterials and their application in the field of tissue engineering, as well as the latest research advances.
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根据来源不同,生物材料可分为天然生物材料和人工合成生物材料两大类。胶原蛋白作为一种典型的天然生物材料,因具有优异的生物相容性、生物可降解性及低免疫原性等特点,被广泛用于医疗、制药和组织工程等领域。目前广泛使用的胶原蛋白主要提取自哺乳动物(如猪、牛和羊)的皮肤和肌腱组织。尽管猪和牛胶原蛋白的三螺旋结构域与人胶原蛋白具有高度同源性,但存在动物源性疾病的传染风险和排斥反应[1]。此外,动物源性胶原蛋白刚性强、大多不溶于水且不同批次间存在较大差异,这在一定程度上限制了其应用。近年来,随着分子生物学技术及转基因技术的进步,设计和规模化制备重组人胶原蛋白生物材料已成为可能。由于具有优良的人源性特征和生物安全性,这些材料在组织工程领域被广泛应用于皮肤、骨、软骨、角膜、肌腱和韧带等多种组织的修复和再生,展现出广阔的应用前景。本文综述重组人胶原蛋白生物材料的设计与制备方式、加工技术及其在组织工程领域的应用情况和最新研究进展,旨在为新型生物支架材料的构建和开发提供思路。
1. 重组人胶原蛋白生物材料的定义与分类
胶原蛋白作为较早被科学界识别及研究的ECM成分之一,对于维持结缔组织的弹性、机械强度和生物完整性起着关键作用。胶原蛋白种类众多、含量丰富,研究者已在脊椎动物中鉴定出29种胶原蛋白,其中Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型胶原蛋白的含量较为丰富。Ⅰ型胶原蛋白是构成皮肤、骨骼、肌腱和韧带的主要成分,Ⅱ型胶原蛋白是软骨的主要成分,而Ⅲ型胶原蛋白则主要参与肌肉和血管的形成。然而,直接从动物中提取的胶原蛋白存在免疫原性问题及可能引发疾病传播的风险。此外,这类胶原蛋白还面临不同批次间差异的挑战。因此开发重组人胶原蛋白生物材料成为克服这些挑战的重要途径之一。
为规范对重组人胶原蛋白生物材料的研究和开发,我国于2021年3月15日发布《重组胶原蛋白生物材料命名指导原则》[2],对重组胶原蛋白的命名和分类进行规范。根据该指导原则,研究者将重组胶原蛋白生物材料分为三大类:重组人胶原蛋白、重组人源化胶原蛋白和重组类胶原蛋白。本文所指的重组人胶原蛋白生物材料是上述3类重组胶原蛋白的统称。
重组人胶原蛋白是指采用DNA重组技术制备的由人胶原蛋白特定型别基因编码的全长氨基酸序列且具有三螺旋结构的重组胶原蛋白。即使重组胶原蛋白材料是由人胶原蛋白特定型别基因编码,若不具有三螺旋结构,也不属于重组人胶原蛋白。根据是否含有非人胶原蛋白氨基酸序列,重组人源化胶原蛋白可被进一步分为A型和B型。A型是指不含有非人胶原蛋白氨基酸序列的材料,包括不具有三螺旋结构的重组胶原蛋白材料,或由人胶原蛋白特定型别基因编码的部分氨基酸序列片段,或人胶原蛋白功能片段的组合(其氨基酸序列中不含连接氨基酸、标记氨基酸等非人胶原蛋白氨基酸序列);B型是指在人胶原蛋白功能片段的组合基础上添加连接氨基酸、标记氨基酸等非人胶原蛋白氨基酸序列的材料。重组类胶原蛋白指采用DNA重组技术制备的经设计、修饰后由特定基因编码的氨基酸序列或其片段,或是这类功能性氨基酸序列片段的组合。
2. 重组人胶原蛋白生物材料的设计与制备方法
重组人胶原蛋白生物材料的制备,主要包括重组胶原蛋白的基因设计、转染和分离纯化。
2.1 基因设计
典型的胶原分子呈纤维状,由3条α多肽链通过盘绕方式形成稳定的三螺旋结构。每条α多肽链的氨基酸具有独特的组成和排列,遵循Gly-X-Y的三肽重复序列模式,其中X和Y位置可由多种氨基酸占据,但X常为脯氨酸、Y常为羟脯氨酸或羟赖氨酸。此外,肽链的羟基化和糖基化以及肽链间的二硫键对胶原分子结构的稳定性起重要作用。不同的氨基酸序列和结构,可导致胶原蛋白在物理化学性质、免疫原性、细胞亲和力等方面存在差异。另外,胶原蛋白分子间的交联程度和胶原蛋白纤维直径也会影响其机械性能[3]。因此,在重组胶原蛋白的基因设计过程中,需要充分考虑这些因素,可通过调整胶原蛋白的氨基酸序列,反向设计并优化基因序列以适应宿主细胞的密码子偏好。根据优化后的基因序列,进行全基因合成,选择合适的酶切位点和设计PCR引物,通过PCR扩增目的基因片段并将其克隆到表达载体中,构建重组表达载体,并在合适的宿主细胞中进行表达,以实现重组胶原蛋白的高效生产和生物学功能的保持,从而实现胶原蛋白定制化生产的目的[4]。现有的重组胶原蛋白定制化技术能够增强胶原蛋白的机械性能和稳定性,可通过调整其水合和生物降解能力,提升其与细胞的黏附性和亲和力,以满足其在不同组织工程领域的应用需求[5]。
2.2 转染
转染是一种基因工程技术,用于将目标基因导入生物体内,以实现重组胶原蛋白的合成。在进行重组人胶原蛋白基因转染之前,需制备并优化质粒。常用的质粒包括pET、pGE系列[6]。将这些质粒转染进不同的表达载体,包括细菌、酵母、植物细胞、哺乳动物细胞等,可实现目标蛋白的表达和生产。转染技术可以分为瞬时转染技术和稳定转染技术两大类,其中瞬时转染是指外源DNA或RNA不整合到宿主染色体,而稳定转染则涉及外源DNA整合到宿主染色体[7]。哺乳动物细胞具有真核细胞结构,适合用于复杂蛋白的生物合成,但成本较高。相比之下,微生物细胞和昆虫细胞具有生长快、易培养、成本较低的优势,因此常用于生产重组蛋白药物。大肠埃希菌因高效的蛋白质合成机制,在高效表达目标蛋白方面表现出色,因此被广泛用于重组人胶原蛋白的研究和大规模制备中。然而,这些方法生产的重组胶原蛋白可能存在一些问题,如分子量、分子结构变化或糖基化差异,为了确保其质量和安全性,需要对这些胶原蛋白进行进一步的纯化和修饰[8]。
2.3 分离纯化
分离纯化是指利用生物化学和分子生物学技术,对重组胶原蛋白进行提纯、鉴定的过程。这一过程涉及多种技术,包括亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤层析等,这些技术可根据目标蛋白与特定配体之间的相互作用,从混合物中有效分离目标蛋白。通过调整不同的层析条件,可以优化并建立高效的纯化工艺流程。例如在胶原蛋白的分离过程中,首先使用硫酸铵沉淀法将胶原蛋白从混合物中分离出来,通过超纯水复溶和超滤,将胶原蛋白转换至适宜的缓冲液中;再使用特定的离子交换柱进行纯化,以去除杂蛋白;最后通过适宜的缓冲液洗脱,得到纯化的重组人胶原蛋白[9]。
3. 重组人胶原蛋白生物材料的加工技术
重组人胶原蛋白生物材料的加工技术对其性能有着显著的影响,可通过物理、化学或生物技术对材料进行表面或本体改性,以改变材料的微观结构、表面特性、机械性能、生物相容性和降解行为等来满足特定的应用需求。目前已有多种生物材料改性技术可用于重组人胶原蛋白生物材料的生产,以满足不同性能需求[10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20],见表1。
Table 1. 重组人胶原蛋白生物材料的改性技术及其目的技术 具体方法 目的 化学技术 使用交联剂,如1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺、N-羟基琥珀酰亚胺和1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺;甲基丙烯酸酐化 增强稳定性、改善生物降解性、增强机械强度和韧性、增加功能性(促进组织再生性能和创面愈合性能等)、增加活性结合位点 物理技术 紫外线照射、冷冻-干燥技术、三维生物打印技术、生物涂层技术等 目的同化学技术 材料复合技术 重组胶原复合壳聚糖、重组胶原复合甲基丙烯酸酐化明胶、重组胶原复合聚氧化乙烯等 目的同化学技术 生物技术 优化发酵、酶处理等 提高生物相容性、降低抗原性、定制化应用 3.1 冷冻-干燥技术
冷冻-干燥技术是一种常用的制备生物制品的技术,该技术涉及3个基本步骤,包括冷冻、初级干燥及二级干燥,旨在有效且彻底地移除目标材料中的水分[21]。鉴于胶原蛋白对高温和机械应力的高度敏感性,冷冻-干燥被视为一种相对温和的蛋白质处理方式,其在去除封闭溶剂的同时,能够维持蛋白质的化学稳定性。冷冻-干燥的工艺变量,如冷冻速率、腔室中施加的压力、冷冻温度和处理样品的时间均会影响最终冻干制品的结构[22]。研究表明,在初级干燥之前,冷冻温度、冷冻速率和冷冻方法的变化均会对冻干制品的孔隙、形态产生影响[23]。使用冷冻-干燥技术加工重组人胶原蛋白时,可使用添加剂改善材料的物理化学特性[10,14]。
3.2 高分子材料加工技术
高分子材料加工是指将高分子原料通过加工工艺加工成所需形状、尺寸和性能的制品的过程。水凝胶是一种特殊形式的高分子材料,它是由亲水性聚合物链通过物理或化学交联形成的三维网络结构,通常由聚合物、交联剂和溶剂制成。胶原蛋白的自组装特性是制备胶原蛋白水凝胶的基础。胶原蛋白水凝胶以胶原蛋白为基材,可通过改变环境条件(如pH值、温度)、调节胶原蛋白浓度或添加交联剂调控其性能[11]。
类似地,将重组人胶原蛋白溶解于适宜的溶剂中,添加交联剂并搅拌后静置,能够促使胶原蛋白分子之间发生交联反应,形成具有三维网络结构的水凝胶。通过调整溶剂、交联剂和反应条件,可以优化重组人胶原蛋白水凝胶的性能[10,12];此外,还可以通过与其他材料混合来改善重组人胶原蛋白水凝胶的功能[20]。
3.3 静电纺丝技术
静电纺丝技术是一种制备纳米纤维的高效技术,该技术借助静电力的作用将带电液滴转化为射流,进而将其拉伸成纤维,最终在接收平台上实现快速固化。在此过程中,溶液或熔体形式的有机聚合物是静电纺丝的首选材料。多种人工合成聚合物,如聚己内酯、聚乳酸和聚乳酸-乙醇酸,可被直接电纺成纳米纤维,并用作生物材料支架。天然生物聚合物,如丝素蛋白、纤维蛋白原、葡聚糖、壳聚糖、海藻酸盐、胶原蛋白和明胶,经适当的溶剂处理后同样可被电纺成纳米纤维[24]。以胶原蛋白为原料,通过调整工艺参数,如溶液浓度、喷涂速度、电压等,可以实现对纤维直径和厚度的精确控制,且微米或纳米尺寸的纤维具备较大的比表面积,不仅能促进细胞附着、增殖和分化,还能更好地模拟天然ECM的结构。在利用静电纺丝技术加工未交联的重组人胶原蛋白时,因其机械稳定性低、降解速率快,直接影响静电纺丝过程中溶液的流动性和喷射行为,最终导致所得纤维的连续性降低、排列疏松,难以达到所需的强度[25]。添加聚氧化乙烯等增塑剂,能适当增强未交联的重组人胶原蛋白的机械性能,从而制造出孔隙较大、纤维结构较疏松的重组人胶原蛋白支架[14,19]。
3.4 三维生物打印技术
三维打印技术,亦被称为增材制造,是一种基于数字模型文件,使用计算机辅助设计软件或三维扫描仪,通过逐层打印的方式来构造物体的制造技术。该技术所采用的工艺流程不仅受特定应用需求的影响,还与使用的材料特性和技术能够实现的细节分辨率密切相关[16]。三维生物打印能够精确地分配生物材料(包括活细胞和ECM组分),快速且可靠地制备仿生组织或器官替代品,以满足临床和产业化生产的需求。在进行三维生物打印时,生物墨水的生物活性和成型性至关重要。有研究表明,采用三维生物打印技术制备的重组人胶原蛋白支架能够提高脂肪干细胞的存活率和增殖能力[26],而且重组人胶原蛋白含量较高的三维打印支架能进一步增强细胞的黏附、增殖和迁移能力[15]。此外,可对重组人胶原蛋白进行甲基丙烯酸酐化改性,从而改善支架的稳定性和机械性能[13]。
3.5 生物涂层技术
涂层技术,即通过在物体表面施加材料层以增强其性能或功能的技术。在涂层技术的众多分支中,生物涂层因含有生物活性成分而显得尤为特殊,通过添加生物活性材料,可增强植入人体内部的医疗器械或装置的生物相容性[27]。胶原蛋白涂层不仅能促进细胞黏附和增殖,而且可为生物分子和药物传递提供有效的平台。通过对重组胶原蛋白进行改性,可以精确调控重组胶原蛋白中负载药物的释放速率,使其成为理想的药物递送载体。这种改性后的重组胶原蛋白,作为涂层使用时,能有效发挥其药物释放功能[28]。此外,重组人胶原蛋白作为生物涂层材料,因缺乏与血小板的结合位点,同时保留了对内皮细胞的亲和力,展现出优异的抗血栓特性[17]。
4. 重组人胶原蛋白生物材料在组织工程领域的应用
重组人胶原蛋白生物材料因具有良好的类人源性特征、可定制化及良好的生物安全性,现已被广泛用于制作组织工程皮肤、骨、软骨、角膜、肌腱和韧带等,展现出较为广阔的应用前景。
4.1 在皮肤组织工程领域的应用
皮肤作为人体最大的器官,承担着多种生理功能。ECM作为皮肤的重要组成部分,主要由Ⅰ型胶原蛋白和Ⅲ型胶原蛋白构成。重组人胶原蛋白的序列与人体内天然胶原蛋白高度一致,相较于动物源性胶原蛋白,重组人胶原蛋白具有更优的生物相容性和更低的免疫排斥风险。重组人胶原蛋白能够为受损创面提供必需的氨基酸和肽段,通过促进细胞的增殖和迁移,进而加速表皮和皮肤附属器的新生,从而提升小鼠创面愈合效率[29]。研究显示,多种重组胶原蛋白联合应用在治疗效果上优于单一重组人胶原蛋白[30]。重组人胶原蛋白作为一种高性能的生物材料,可以被开发成多种形态的产品,如水凝胶、真皮支架、微针等,用于有效负载和递送药物及生长因子,以提升创面愈合效率,实现再生性修复的目标[11,31]。
重组人胶原蛋白作为一种人工合成的ECM关键组分,在促进创面愈合方面展现出了巨大的潜力。Long等[31]研究显示,添加重组人胶原蛋白构建的微针能有效促进Fb的增殖和迁移,并可通过减轻炎症反应、促进血管生成和胶原沉积来加速1型糖尿病大鼠创面愈合。另有研究显示,负载碱性FGF的重组人胶原蛋白水凝胶促进小鼠创面愈合的作用明显优于单纯重组人胶原蛋白水凝胶[20,32]。Nuutila等[33]将负载猪自体皮肤细胞的重组人Ⅲ型胶原蛋白水凝胶用于猪全层皮肤缺损创面,观察到该水凝胶能够加速早期创面肉芽组织的形成,并且水凝胶在体内的稳定性会随负载细胞类型的不同而发生显著变化。当前临床治疗增生性瘢痕的策略多属于瘢痕形成后的补救措施。Kang等[18]研发了重组人Ⅰ型胶原蛋白结合壳聚糖及铜离子的多功能水凝胶,可在短时间内促进肉芽组织的形成和胶原的有序排列,有助于创面及其周围组织的再生和功能恢复,在组织修复过程中即可减少瘢痕产生,从而提高创面愈合的质量。
在临床研究与应用前景方面,纯化的重组人胶原蛋白已被应用于慢性溃疡、烧伤创面的治疗,以改善患者的治疗效果和生活质量[34, 35]。有研究者将重组人Ⅰ型胶原蛋白以凝胶形式应用于慢性下肢溃疡患者的治疗,结果显示,重组人Ⅰ型胶原蛋白在刺激血管生成、促进肉芽组织新生、减少渗出、减轻局部炎症反应以及加速溃疡创面愈合方面展现出积极效果[35]。此外,新型高生物活性负载重组人胶原蛋白的水凝胶敷料也已被用于Ⅱ度烧伤患者的治疗,并显示出良好的促进创面上皮化的效果[34]。然而,这些临床研究普遍存在样本量较小和缺乏长期随访以评估其对瘢痕生成的影响的局限性,需要进行更广泛和深入的临床试验,验证该水凝胶敷料在临床创面治疗中的长期效果。
4.2 在骨和软骨组织工程领域的应用
骨骼是人体的核心支撑,对维持健康和保障生活质量至关重要。针对骨损伤、特定骨骼疾病或美容需求,常需骨移植替代物修复。理想的骨支架须具有适当的刚性、机械强度、抗压性及良好的生物相容性,并能模拟骨的微观结构,能为血管新生及无机物质沉积提供有利的微环境[36]。Collagraft®是一种由多孔羟基磷灰石和动物源性Ⅰ型胶原蛋白混合而成的材料,已被广泛应用于长骨骨折的临床治疗超过20年。然而,部分患者可能会对Collagraft®中的胶原蛋白或其他成分产生免疫排斥或过敏反应[37]。有研究者使用重组人Ⅰ型胶原蛋白和重组人骨形态发生蛋白-2联合治疗大鼠颅骨缺损,未观察到免疫排斥反应,且观察到有明显的骨形成,这表明重组人Ⅰ型胶原蛋白在骨形成方面存在明显优势[38]。β-磷酸三钙因具有良好的生物降解性而被用于骨再生,然而其促进成骨细胞再生的能力有限[39]。Umeyama等[40]利用三维打印技术构建β-磷酸三钙支架以开发人造骨,并使用重组人胶原蛋白肽来修饰支架表面,将其用于颅骨缺损小鼠中,观察到这些支架能够促进骨组织新生和钙化;并且重组人胶原蛋白富含精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸序列,能够促进细胞的黏附、增殖以及基质合成,从而有利于骨组织再生。
将软骨细胞与可降解支架结合培养是组织工程的另一研究焦点。重组人Ⅱ型胶原蛋白水凝胶与自体软骨细胞结合可作为创面修复填充物以促进软骨修复,但其与自体正常软骨的整合度有限[41]。与动物来源的胶原蛋白相比,重组人Ⅱ型胶原蛋白结合聚乳酸支架在猪关节修复中表现更佳,能够减少软骨下囊肿发生,但仍需提升该支架的生物力学性能使其更接近天然软骨[42]。
4.3 在角膜组织工程领域的应用
据估计,全球约有1 000万人因角膜问题失明,而安全角膜资源稀缺,亟须稳定替代品。角膜替代物或移植材料的理想特性包括高透明度、适当的折射率和韧性,以及具有能够与宿主角膜组织完美融合且不引起血管化的能力。研究表明,动物源性胶原蛋白作为角膜替代物,不仅展现出与人类角膜相似的卓越的生物相容性,还能促进角膜细胞和神经的再生[43]。然而,作为异种移植物,这些动物源性胶原蛋白作为角膜替代物仍会引发低水平但可观测的免疫反应。角膜基质的主要成分是Ⅰ型胶原蛋白,但也包含少量Ⅲ型和Ⅴ型胶原蛋白。在同一个反应体系中,将重组人Ⅰ型胶原蛋白和重组人Ⅲ型胶原蛋白分别与N-羟基琥珀酰亚胺和1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺形成的混合交联剂进行交联后,形成的重组人Ⅲ型胶原蛋白水凝胶的透光性优于重组人Ⅰ型胶原蛋白水凝胶,而2种水凝胶的力学性能差异不显著[44]。另有研究表明,用相同浓度的交联剂交联后,重组人Ⅲ型胶原蛋白水凝胶较重组人Ⅰ型胶原蛋白水凝胶拉伸强度和模量更高[12]。一项为期4年的临床研究显示,将无细胞重组人胶原蛋白支架植入患者的角膜后未发生排斥反应,且患者角膜中的基质细胞持续活跃地迁移到最初无细胞的重组人胶原蛋白支架中。术后4年,位于角膜上皮基底膜下神经丛的神经延伸至生物合成支架的中央角膜区域,并且新生神经纤维与健康角膜的神经纤维相似[45]。Gibney等[46]利用重组人Ⅲ型胶原蛋白与高分辨率气溶胶喷墨打印技术制造角膜,该角膜的光学特性优越、基质弹性模量高。然而,重组人Ⅲ型胶原蛋白降解对角膜细胞的影响尚不明确。
4.4 在肌腱和韧带组织工程领域的应用
肌腱和韧带具有独特的组织特性,需高强度材料才能制备。胶原蛋白作为ECM的主要承重成分,对于肌腱的机械强度起着决定性作用。然而通过生物或物理手段制造的胶原蛋白水凝胶或多孔胶原蛋白支架的机械性能均远不能达到肌腱和韧带组织的水平。Yuan等[47]采用静电纺丝技术,利用天然肌腱ECM中的Ⅰ型胶原蛋白和硫酸软骨素构建了一种肌腱再生支架,该支架支持人骨髓间充质干细胞的黏附、铺展,并能提高细胞活力和促进细胞增殖,用于大鼠跟腱缺损修复中被证实具有促进肌腱组织再生的作用。此外,有临床研究表明,将交联的重组人Ⅰ型胶原蛋白、富血小板血浆与可注射水凝胶混合注射用于治疗肱骨外上髁炎,可通过减轻疼痛、促进肌腱修复和改善肌腱的整体功能状态,有效改善患者的握力和肌腱外观[48]。尽管如此,目前应用重组人胶原蛋白修复肌腱和韧带损伤的研究仍相对有限。结合优选基质材料与重组人胶原蛋白,提升损伤修复效果,是该领域未来的重要研究方向。
4.5 在其他组织工程领域的应用
重组人胶原蛋白生物材料在心血管和口腔领域同样展现出应用潜力。研究表明,重组人Ⅰ型胶原蛋白和重组人Ⅲ型胶原蛋白能够恢复小鼠急性心肌梗死后的心肌机械性能,并抑制心肌的病理重塑过程[49]。Mostert等[50]将甲基丙烯酸酐化的重组人Ⅰ型胶原蛋白水凝胶作为支架,以模拟心脏细胞微环境。这种水凝胶不仅能支持心肌细胞和心脏Fb的存活,而且能够在紫外光照射下交联,其交联后的硬度远大于没有经过甲基丙烯酸酐化处理的胶原蛋白水凝胶,这为重组人胶原蛋白在心脏组织工程中的应用提供了基础。此外,使用透明质酸和重组人Ⅲ型胶原蛋白制备的心血管支架涂层,能有效消除血小板结合位点,展现出良好的血液相容性,同时可有效促进内皮细胞的增殖,并通过引导平滑肌细胞向收缩表型分化,减少新生内膜的过度增生[17]。三维打印的胶原蛋白生物材料具有促进牙髓-牙本质复合体、牙周组织、颌面部的骨及软骨再生方面的作用[51],利用重组人Ⅰ型胶原蛋白制成的胶原膜展现出强大的抗酶解能力,具有出色的屏障稳定性[38]。
5. 问题与展望
尽管重组人胶原蛋白生物材料的开发及在组织工程领域的应用仍处于初步探索阶段,但其应用范围正在逐步拓宽。随着科技的进步和生物工程技术的持续发展,重组蛋白技术已成为生物医药领域研究的重要技术手段。通过基因工程的方法,利用重组胶原蛋白技术能够在微生物、哺乳动物细胞或其他适合的生物体系中生产出重组人胶原蛋白,从而避免动物源性胶原蛋白可能引发的免疫排斥反应和病原微生物污染等风险。然而,由于缺乏相应的修饰酶,重组人胶原蛋白链无法在翻译后获得必要修饰,因此无法形成天然人胶原蛋白所具有的二级或更高级结构。除了生产与天然人胶原蛋白结构相似的重组胶原蛋白外,利用基因工程技术还可根据人们的需求进行改造、优化胶原蛋白的生物活性与功能,生产胶原蛋白新变体、胶原蛋白与其他分子(如生长因子)的嵌合体,尽管这些创新产品在成本和稳定性方面存在一些挑战,但这些问题正在逐步被解决。
展望未来,随着生物技术的不断发展和重组人胶原蛋白的生产技术的不断完善,可获取纯度更高、稳定性和功能性更好、结构更接近天然胶原蛋白的重组人胶原蛋白。通过多学科合作,促进重组人胶原蛋白技术的进步和应用领域的拓展,对重组人胶原蛋白进行个性化定制,可为患者提供更精准的治疗方案。此外,结合重组人胶原蛋白的智能电子元件,为能够监测生理参数、提供药物管理或促进创面愈合的植入物的临床应用提供了新思路。这些潜在的发展方向展示了重组人胶原蛋白生物材料的巨大潜力,随着科学技术的不断进步和创新,其在医学、生物工程等领域的应用前景将更加广阔。
所有作者声明不存在利益冲突 -
参考文献
(51) [1] SorushanovaA,DelgadoLM,WuZ,et al.The collagen suprafamily: from biosynthesis to advanced biomaterial development[J].Adv Mater,2019,31(1):e1801651.DOI: 10.1002/adma.201801651. [2] 国家药品监督管理局 重组胶原蛋白生物材料命名指导原则 2021-03-15 2024-02-29 https://www.nmpa.gov.cn/directory/web/nmpa/images/1615803527787088341.doc 国家药品监督管理局. 重组胶原蛋白生物材料命名指导原则[EB/OL]. (2021-03-15) [2024-02-29]. https://www.nmpa.gov.cn/directory/web/nmpa/images/1615803527787088341.doc.
[3] SpaansS,FransenPKH,SchotmanMJG,et al.Supramolecular modification of a sequence-controlled collagen-mimicking polymer[J].Biomacromolecules,2019,20(6):2360-2371.DOI: 10.1021/acs.biomac.9b00353. [4] TvaroškaI.Glycosylation modulates the structure and functions of collagen: a review[J].Molecules,2024,29(7):1417.DOI: 10.3390/molecules29071417. [5] CaoL,ZhangZ,YuanD,et al.Tissue engineering applications of recombinant human collagen: a review of recent progress[J].Front Bioeng Biotechnol,2024,12:1358246.DOI: 10.3389/fbioe.2024.1358246. [6] GreenMR,SambrookJ.Cloning and transformation with plasmid vectors[J].Cold Spring Harb Protoc,2021,2021(11).DOI: 10.1101/pdb.top101170. [7] ChastagnierL,MarquetteC,PetiotE.In situ transient transfection of 3D cell cultures and tissues, a promising tool for tissue engineering and gene therapy[J].Biotechnol Adv,2023,68:108211.DOI: 10.1016/j.biotechadv.2023.108211. [8] WuD,RobinsonCV.Understanding glycoprotein structural heterogeneity and interactions: insights from native mass spectrometry[J].Curr Opin Struct Biol,2022,74:102351.DOI: 10.1016/j.sbi.2022.102351. [9] 梁鑫,张仁怀,吕自力,等.重组人Ⅲ型胶原蛋白的分离纯化[J].食品与发酵工业,2020,46(16):159-163.DOI: 10.13995/j.cnki.11-1802/ts.023967. [10] YangY,Campbell RitchieA,EverittNM.Recombinant human collagen/chitosan-based soft hydrogels as biomaterials for soft tissue engineering[J].Mater Sci Eng C Mater Biol Appl,2021,121:111846.DOI: 10.1016/j.msec.2020.111846. [11] ZhangY,WangY,LiY,et al.Application of collagen-based hydrogel in skin wound healing[J].Gels,2023,9(3):185.DOI: 10.3390/gels9030185. [12] LiuW,MerrettK,GriffithM,et al.Recombinant human collagen for tissue engineered corneal substitutes[J].Biomaterials,2008,29(9):1147-1158.DOI: 10.1016/j.biomaterials.2007.11.011. [13] WangZ,YangY,GaoY,et al.Establishing a novel 3D printing bioinks system with recombinant human collagen[J].Int J Biol Macromol,2022,211:400-409.DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2022.05.088. [14] DengA,YangY,DuS,et al.Electrospinning of in situ crosslinked recombinant human collagen peptide/chitosan nanofibers for wound healing[J].Biomater Sci,2018,6(8):2197-2208.DOI: 10.1039/c8bm00492g. [15] YangY,XuR,WangC,et al.Recombinant human collagen-based bioinks for the 3D bioprinting of full-thickness human skin equivalent[J].Int J Bioprint,2022,8(4):611.DOI: 10.18063/ijb.v8i4.611. [16] 刘清华,李曌,恩和吉日嘎拉,等. 三维生物打印支架的拓扑结构介导的免疫反应对小鼠毛囊周期的影响[J]. 中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(1):43-49. DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20231020-00125. [17] YangL,WuH,LuL,et al.A tailored extracellular matrix (ECM) - mimetic coating for cardiovascular stents by stepwise assembly of hyaluronic acid and recombinant human type III collagen[J].Biomaterials,2021,276:121055.DOI: 10.1016/j.biomaterials.2021.121055. [18] KangD,WangW,LiY,et al.Biological macromolecule hydrogel based on recombinant type I collagen/chitosan scaffold to accelerate full-thickness healing of skin wounds[J].Polymers (Basel),2023,15(19):3919.DOI: 10.3390/polym15193919. [19] ChenL,ZhuC,FanD,et al.A human-like collagen/chitosan electrospun nanofibrous scaffold from aqueous solution: electrospun mechanism and biocompatibility[J].J Biomed Mater Res A,2011,99(3):395-409.DOI: 10.1002/jbm.a.33202. [20] GuoY,BianZ,XuQ,et al.Novel tissue-engineered skin equivalent from recombinant human collagen hydrogel and fibroblasts facilitated full-thickness skin defect repair in a mouse model[J].Mater Sci Eng C Mater Biol Appl,2021,130:112469.DOI: 10.1016/j.msec.2021.112469. [21] MerivaaraA,ZiniJ,KoivunotkoE,et al.Preservation of biomaterials and cells by freeze-drying: change of paradigm[J].J Control Release,2021,336:480-498.DOI: 10.1016/j.jconrel.2021.06.042. [22] KatrilakaC,KaripidouN,PetrouN,et al.Freeze-drying process for the fabrication of collagen-based sponges as medical devices in biomedical engineering[J].Materials (Basel),2023,16(12):4425.DOI: 10.3390/ma16124425. [23] YamamotoT,RandriantsilefisoaR,SprecherCM,et al.Fabrication of collagen-hyaluronic acid cryogels by directional freezing mimicking cartilage arcade-like structure[J].Biomolecules,2022,12(12):1809.DOI: 10.3390/biom12121809. [24] JiD, LinY, GuoX, et al. Electrospinning of nanofibres[J]. Nature Reviews Methods Primers,2024,4(1). DOI: 10.1038/s43586-023-00278-z. [25] BazrafshanZ,StyliosGK.Spinnability of collagen as a biomimetic material: a review[J].Int J Biol Macromol,2019,129:693-705.DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2019.02.024. [26] TytgatL,DobosA,MarkovicM,et al.High-resolution 3D bioprinting of photo-cross-linkable recombinant collagen to serve tissue engineering applications[J].Biomacromolecules,2020,21(10):3997-4007.DOI: 10.1021/acs.biomac.0c00386. [27] 罗高兴,周璇. 先进生物材料在创面修复中的应用[J]. 中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(1):26-32. DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20231128-00211. [28] HumJ,BoccacciniAR.Collagen as coating material for 45s5 bioactive glass-based scaffolds for bone tissue engineering[J].Int J Mol Sci,2018,19(6):1807.DOI: 10.3390/ijms19061807. [29] DongZ,LiuQ,HanX,et al.Electrospun nanofibrous membranes of recombinant human collagen type III promote cutaneous wound healing[J].J Mater Chem B,2023,11(27):6346-6360.DOI: 10.1039/d3tb00438d. [30] DongY,ZhuW,LeiX,et al.Treatment of acute wounds with recombinant human-like collagen and recombinant human-like fibronectin in C57BL/6 mice individually or in combination[J].Front Bioeng Biotechnol,2022,10:908585.DOI: 10.3389/fbioe.2022.908585. [31] LongLY,LiuWQ,LiL,et al.Dissolving microneedle-encapsulated drug-loaded nanoparticles and recombinant humanized collagen type III for the treatment of chronic wound via anti-inflammation and enhanced cell proliferation and angiogenesis[J].Nanoscale,2022,14(4):1285-1295.DOI: 10.1039/d1nr07708b. [32] GuoY,XuB,WangY,et al.Dramatic promotion of wound healing using a recombinant human-like collagen and bFGF cross-linked hydrogel by transglutaminase[J].J Biomater Sci Polym Ed,2019,30(17):1591-1603.DOI: 10.1080/09205063.2019.1652416. [33] NuutilaK,PeuraM,SuomelaS,et al.Recombinant human collagen III gel for transplantation of autologous skin cells in porcine full-thickness wounds[J].J Tissue Eng Regen Med,2015,9(12):1386-1393.DOI: 10.1002/term.1691. [34] BenC, LiuX, ShenT, et al. A recombinant human collagen hydrogel for the treatment of partial-thickness burns: a prospective, self-controlled clinical study[J]. Burns,2021,47(3):634-642. DOI: 10.1016/j.burns.2020.01.006. [35] WiserI,TamirE,KaufmanH,et al.A novel recombinant human collagen-based flowable matrix for chronic lower limb wound management: first results of a clinical trial[J].Wounds,2019,31(4):103-107. [36] PasiniC, PandiniS, RamorinoG, et al. Tailoring the properties of composite scaffolds with a 3D-printed lattice core and a bioactive hydrogel shell for tissue engineering[J]. J Mech Behav Biomed Mater,2024,150:106305. DOI: 10.1016/j.jmbbm.2023.106305. [37] NazarovaNZ,UmarovaGS,VaimanM,et al.The surgical management of the cavity and bone defects in enchondroma cases: a prospective randomized trial[J].Surg Oncol,2021,37:101565.DOI: 10.1016/j.suronc.2021.101565. [38] YangC,HillasPJ,BáezJA,et al.The application of recombinant human collagen in tissue engineering[J].BioDrugs,2004,18(2):103-119.DOI: 10.2165/00063030-200418020-00004. [39] SunT,FengZ,HeW,et al.Novel 3D-printing bilayer GelMA-based hydrogel containing BP,β-TCP and exosomes for cartilage-bone integrated repair[J].Biofabrication,2023,16(1):015008. DOI: 10.1088/1758-5090/ad04fe. [40] UmeyamaR,YamawakiT,LiuD,et al.Optimization of culture duration of bone marrow cells before transplantation with a β-tricalcium phosphate/recombinant collagen peptide hybrid scaffold[J].Regen Ther,2020,14:284-295.DOI: 10.1016/j.reth.2020.04.005. [41] PulkkinenHJ,TiituV,ValonenP,et al.Repair of osteochondral defects with recombinant human type II collagen gel and autologous chondrocytes in rabbit[J].Osteoarthritis Cartilage,2013,21(3):481-490.DOI: 10.1016/j.joca.2012.12.004. [42] MuhonenV, SaloniusE, HaaparantaAM, et al. Articular cartilage repair with recombinant human type II collagen/polylactide scaffold in a preliminary porcine study[J]. J Orthop Res,2016,34(5):745-753. DOI: 10.1002/jor.23099. [43] HollandG,PanditA,Sánchez-AbellaL,et al.Artificial cornea: past, current, and future directions[J].Front Med (Lausanne),2021,8:770780.DOI: 10.3389/fmed.2021.770780. [44] MerrettK,FagerholmP,McLaughlinCR,et al.Tissue-engineered recombinant human collagen-based corneal substitutes for implantation: performance of type I versus type III collagen[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2008,49(9):3887-3894.DOI: 10.1167/iovs.07-1348. [45] FagerholmP,LagaliNS,OngJA,et al.Stable corneal regeneration four years after implantation of a cell-free recombinant human collagen scaffold[J].Biomaterials,2014,35(8):2420-2427.DOI: 10.1016/j.biomaterials.2013.11.079. [46] GibneyR,PattersonJ,FerrarisE.High-resolution bioprinting of recombinant human collagen type III[J].Polymers (Basel),2021,13(17):2973.DOI: 10.3390/polym13172973. [47] YuanH,LiX,LeeMS,et al.Collagen and chondroitin sulfate functionalized bioinspired fibers for tendon tissue engineering application[J].Int J Biol Macromol,2021,170:248-260.DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2020.12.152. [48] FarkashU,AvisarE,VolkI,et al.First clinical experience with a new injectable recombinant human collagen scaffold combined with autologous platelet-rich plasma for the treatment of lateral epicondylar tendinopathy (tennis elbow)[J].J Shoulder Elbow Surg,2019,28(3):503-509.DOI: 10.1016/j.jse.2018.09.007. [49] McLaughlinS,McNeillB,PodrebaracJ,et al.Injectable human recombinant collagen matrices limit adverse remodeling and improve cardiac function after myocardial infarction[J].Nat Commun,2019,10(1):4866.DOI: 10.1038/s41467-019-12748-8. [50] MostertD,JorbaI,GroenenBGW,et al.Methacrylated human recombinant collagen peptide as a hydrogel for manipulating and monitoring stiffness-related cardiac cell behavior[J].iScience,2023,26(4):106423.DOI: 10.1016/j.isci.2023.106423. [51] 曾奕苇,刘海,沙川路,等.3D打印胶原基材料及其在口腔组织再生修复中的应用[J].皮革科学与工程,2023,33(2):47-54.DOI: 10.19677/j.issn.1004-7964.2023.02.008. -
Table 1. 重组人胶原蛋白生物材料的改性技术及其目的
技术 具体方法 目的 化学技术 使用交联剂,如1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺、N-羟基琥珀酰亚胺和1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺;甲基丙烯酸酐化 增强稳定性、改善生物降解性、增强机械强度和韧性、增加功能性(促进组织再生性能和创面愈合性能等)、增加活性结合位点 物理技术 紫外线照射、冷冻-干燥技术、三维生物打印技术、生物涂层技术等 目的同化学技术 材料复合技术 重组胶原复合壳聚糖、重组胶原复合甲基丙烯酸酐化明胶、重组胶原复合聚氧化乙烯等 目的同化学技术 生物技术 优化发酵、酶处理等 提高生物相容性、降低抗原性、定制化应用 -
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