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摘要:
目的 探讨严重烧伤小鼠肠-胰岛轴功能的变化及其作用。 方法 该研究为实验研究。将90只雄性8~10周龄C57BL/6J小鼠按随机数字表法分为假伤组和烧伤组（每组45只小鼠）,于烧伤组小鼠背部制备30%体表总面积Ⅲ度烫伤（以下称烧伤）创面,假伤组小鼠模拟致假伤。伤后24 h,检测空腹血糖（样本数为12）后,行腹腔糖耐量实验和口服糖耐量实验,并绘制血糖浓度-时间变化曲线,计算曲线下面积（样本数为6）；分别于腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液前及腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液后30、60、120 min从心脏取血,采用酶联免疫吸附测定（ELISA）法检测血浆胰岛素和胰高血糖素样肽1（GLP-1）水平（样本数为3）；取每组3只小鼠回肠组织,行免疫荧光染色及原位末端标记染色检测肠道L细胞GLP-1表达及凋亡水平；提取每组6只小鼠胰岛行葡萄糖刺激的胰岛素分泌实验,分别经低糖（2.8 mmol/L葡萄糖）和高糖（16.7 mmol/L葡萄糖）孵育后取上清液,采用ELISA法检测胰岛素水平。取36只雄性8~10周龄C57BL/6J小鼠,按随机数字表法分为假伤组、烧伤组和烧伤+艾塞那肽4（Ex-4）组（每组12只小鼠）,对假伤组和烧伤组小鼠行同前对应处理,将烧伤+Ex-4组小鼠同烧伤组小鼠致伤后给予其GLP-1受体激动剂Ex-4。伤后24 h,提取小鼠胰岛,采用蛋白质印迹法检测重链结合蛋白（BIP）、蛋白激酶R样内质网激酶（PERK）、磷酸化PERK（p-PERK）、真核翻译起始因子2α（eIF2α）、磷酸化eIF2α（p-eIF2α）和CCAAT/增强子结合蛋白同源蛋白（CHOP）的蛋白表达并计算p-PERK/PERK、p-eIF2α/eIF2α比值（样本数为3）,采用流式细胞术检测胰岛细胞凋亡率（样本数为3）,同前行葡萄糖刺激的胰岛素分泌实验以检测上清液中胰岛素水平（样本数为6）。 结果 伤后24 h,烧伤组小鼠空腹血糖为（7.3±1.0）mmol/L,显著高于假伤组的（5.1±0.6）mmol/L（t=6.36,P<0.05）。伤后24 h,在腹腔糖耐量实验和口服糖耐量实验中,烧伤组小鼠血糖浓度-时间变化曲线下面积均显著大于假伤组（t值分别为4.32、6.03,P<0.05）；与假伤组相比,烧伤组小鼠经腹腔注射给予葡萄糖溶液前血浆胰岛素水平及经腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液前血浆GLP-1水平均显著降低（P<0.05）,经腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液后30、60、120 min血浆胰岛素水平及经灌胃给予葡萄糖溶液后30、60 min血浆GLP-1水平均显著降低（P<0.05）。伤后24 h,与假伤组相比,烧伤组小鼠肠道L细胞GLP-1表达水平显著降低（t=7.74,P<0.05）,凋亡水平显著升高（t=14.28,P<0.05）。伤后24 h,烧伤组小鼠经高糖孵育的胰岛上清液中胰岛素水平为（8.5±0.4）ng/mg,显著低于假伤组的（15.7±0.3）ng/mg（t=18.68,P<0.05）。伤后24 h,与假伤组相比,烧伤组小鼠胰岛中BIP、p-PERK/PERK、p-eIF2α/eIF2α和CHOP的蛋白表达水平均显著升高（P<0.05）；与烧伤组相比,烧伤+Ex-4组小鼠胰岛中BIP、p-PERK/PERK、p-eIF2α/eIF2α和CHOP的蛋白表达水平均显著降低（P<0.05）。伤后24 h,烧伤组小鼠胰岛细胞凋亡率为（32.0±3.0）%,显著高于假伤组的（10.3±2.5）%（P<0.05）；烧伤+Ex-4组小鼠胰岛细胞凋亡率为（20.0±3.6）%,显著低于烧伤组（P<0.05）。伤后24 h,烧伤组小鼠经高糖孵育的胰岛上清液中胰岛素水平显著低于假伤组（P<0.05）,烧伤+Ex-4组小鼠经高糖孵育的胰岛上清液中胰岛素水平显著高于烧伤组（P<0.05）。 结论 严重烧伤后小鼠肠-胰岛轴功能障碍,肠道L细胞凋亡增多、GLP-1合成及分泌减少,胰岛细胞发生内质网应激、凋亡增多,葡萄糖刺激的胰岛素分泌减少；GLP-1受体激动剂Ex-4能保护严重烧伤小鼠胰岛细胞功能,可能通过减轻内质网应激降低胰岛细胞凋亡水平,促进胰岛素分泌。 Abstract:Objective To explore the changes in entero-insular axis function and its role in mice with severe burns. Methods This study was an experimental study. Ninety C57BL/6J male mice aged 8-10 weeks were divided into sham injury group and burn group (with 45 mice in each group) according to the random number table. A full-thickness scald (hereinafter referred to as burn) wound of 30% of the total body surface area was created on the back of mice in burn group, and the mice in sham injury group were simulated to cause a sham injury. Twenty-four hours after injury, the fasting blood glucose was measured (n=12), followed by intraperitoneal glucose tolerance test and oral glucose tolerance test; the curve of blood glucose concentration changes over time was plotted, and the area under the curve was calculated (n=6); the blood was taken from the heart before intraperitoneal injection or gavage of glucose solution and at 30, 60, and 120 minutes after intraperitoneal injection or gavage of glucose solution for measuring the plasma insulin and glucagon like peptide-1 (GLP-1) levels using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), with a sample number of 3; the ileal tissue was taken from 3 mice in each group for detecting the GLP-1 expression and apoptosis levels of intestinal L cells by immunofluorescence staining and TdT-mediated dUTP nick-end labeling staining; the pancreatic islets were collected from 6 mice in each group for glucose-stimulated insulin secretion experiments. After incubation with low glucose (2.8 mmol/L glucose) and high glucose (16.7 mmol/L glucose), the supernatant was taken and the insulin level was detected using ELISA. Thirty-six C57BL/6J male mice aged 8-10 weeks were divided into sham injury group, burn group, and burn+exendin-4 (Ex-4) group (with 12 mice in each group) according to the random number table. The mice in sham injury group and burn group were subjected to the same corresponding treatment as before. The mice in burn+Ex-4 group were injured in the same way as the burn group mice followed by treatment with GLP-1 receptor agonist Ex-4. Twenty-four hours after injury, mouse pancreatic islets were collected, the protein expressions of heavy-chain binding protein (BIP), protein kinase R-like endoplasmic reticulum kinase (PERK), phosphorylated PERK (p-PERK), eukaryotic translation initiation factor 2α (eIF2α), phosphorylated eIF2α (p-eIF2α), and CCAAT/enhancer-binding protein homologous protein (CHOP) were detected using Western blotting, and the p-PERK/PERK and p-eIF2α/eIF2α ratios were calculated (n=3), the apoptosis rate of pancreatic islet cells was detected using flow cytometry (n=3), the glucose stimulated insulin secretion experiment was conducted as before to detect insulin levels in the supernatant (n=6). Results Twenty-four hours after injury, the fasting blood glucose of mice in burn group was (7.3±1.0) mmol/L, which was significantly higher than (5.1±0.6) mmol/L in sham injury group (t=6.36, P<0.05). Twenty-four hours after injury, in the intraperitoneal glucose tolerance test and oral glucose tolerance test, the areas under the curve of blood glucose concentration changes over time of mice in burn group were significantly larger than those in sham injury group (with t values of 4.32 and 6.03, respectively, P<0.05); compared with those in sham injury group, the plasma insulin levels of mice before intraperitoneal injection of glucose solution and the plasma GLP-1 levels of mice before intraperitoneal injection or gavage of glucose solution in burn group were significantly decreased (P<0.05), and the plasma levels of insulin of mice at 30, 60, and 120 minutes after intraperitoneal injection or gavage of glucose solution, as well as the plasma levels of GLP-1 of mice at 30 and 60 minutes after gavage of glucose solution were significantly decreased in burn group (P<0.05). Twenty-four hours after injury, compared with those in sham injury group, the GLP-1 expression level of intestinal L cells of mice in burn group was significantly decreased (t=7.74, P<0.05), and the apoptosis level was significantly increased (t=14.28, P<0.05). Twenty-four hours after injury, the insulin level in the supernatant of mice pancreatic islet incubated with high glucose in burn group was (8.5±0.4) ng/mg, which was significantly lower than (15.7±0.3) ng/mg in sham injury group (t=18.68, P<0.05). Twenty-four hours after injury, compared with those in sham injury group, the protein expression levels of BIP, p-PERK/PERK, p-eIF2α/eIF2α, and CHOP in the pancreatic islets of mice in burn group were significantly increased (P<0.05); compared with those in burn group, the protein expression levels of BIP, p-PERK/PERK, p-eIF2α/eIF2α, and CHOP in the pancreatic islets of mice in burn+Ex-4 group were significantly decreased (P<0.05). Twenty-four hours after injury, the apoptosis rate of pancreatic islet cells of mice in burn group was (32.0±3.0)%, which was significantly higher than (10.3±2.5)% in sham injury group (P<0.05); the apoptosis rate of pancreatic islet cells of mice in burn+Ex-4 group was (20.0±3.6)%, which was significantly lower than that in burn group (P<0.05). Twenty-four hours after injury, the insulin level in the supernatant of mice pancreatic islet incubated with high glucose in burn group was significantly lower than that in sham injury group (P<0.05), while the insulin level in the supernatant of mice pancreatic islet incubated with high glucose in burn+Ex-4 group was significantly higher than that in burn group (P<0.05). Conclusions After severe burns, the mice display dysfunction of the entero-insular axis, increased apoptosis of intestinal L cells, decreased synthesis and secretion of GLP-1, endoplasmic reticulum stress and increased apoptosis in pancreatic islet cells and a decrease in glucose-stimulated insulin secretion. The GLP-1 receptor agonist Ex-4 can protect the function of pancreatic islet cells of mice with severe burns, reducing the apoptosis level of pancreatic islet cells and promoting insulin secretion possibly via the alleviation of endoplasmic reticulum stress. -
Key words:
- Burns /
- Insulin /
- Glucagon-like peptide 1 /
- Endoplasmic reticulum stress /
- Hyperglycemia /
- Entero-insular axis
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(1)靶向能量代谢组学分析显示,糖尿病大鼠创面组织中有5种差异能量代谢物顺乌头酸、烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸、5'-鸟苷二磷酸、L-苹果酸、乳酸,为理解糖尿病创面愈合的代谢机制提供了新视角。
(2)京都基因与基因组百科全书富集分析揭示5种差异能量代谢物主要在胰高血糖素、Rap1、Ras、缺氧诱导因子1信号通路及三羧酸循环、丙酮酸代谢、线粒体自噬、胞吞作用途径中显著富集。
Highlights:
(1)Targeted energy metabolomics analysis revealed that there were 5 differential energy metabolites in the wound tissue of diabetic rats, including cis-aconitic acid, nicotinamide adenine dinucleotide phosphate, 5'-guanosine diphosphate, L-malic acid, and lactic acid. It provided a new perspective for understanding the metabolic mechanisms underlying diabetic wound healing.
(2)Kyoto encyclopedia of genes and genomes enrichment analysis revealed that the five differential energy metabolites were significantly enriched mainly in the glucagon, Rap1, Ras, hypoxia-inducible factor 1 signaling pathways as well as the tricarboxylic acid cycle, pyruvate metabolism, mitochondrial autophagy, endocytosis pathways.
糖尿病创面因发病率高、修复困难和愈合缓慢,严重影响患者的生活质量[1]。糖尿病创面延迟愈合与多种因素有关,包括炎症的延迟消退、氧化应激的增加以及细胞功能的失调。这些因素共同作用于创面微环境,影响细胞功能,从而阻碍创面愈合。在代谢组学研究中,通过分析糖尿病创面组织中的差异代谢物,可以揭示与抗氧化、抗炎相关的氨基酸代谢途径以及与能量代谢相关的途径,这些途径的改变可能是糖尿病创面愈合障碍的原因[2]。
一项关于代谢通路分析的研究表明,糖尿病大鼠创面组织中的差异代谢物涉及嘌呤代谢和甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸代谢及花生四烯酸代谢等,这些代谢物主要集中在与抗氧化、抗炎有关的氨基酸代谢途径中[3]。此外,胞外ATP的代谢及其相关指标在糖尿病创面修复过程中炎症反应阶段的作用引起了广泛的关注。研究表明,在糖尿病创面愈合的炎症反应阶段,炎症反应的强度不足,导致ATP、ATP水解酶以及嘌呤信号受体均处于较低水平。值得注意的是,通过外源性补充ATP,有可能在一定程度上加速小鼠糖尿病创面的愈合进程[4]。尽管如此,关于糖尿病创面组织的能量代谢状态仍没有确切定论,因此本研究团队采用链脲佐菌素（streptozotocin,STZ）诱导的糖尿病大鼠的创面组织进行靶向能量代谢组学研究,筛选差异能量代谢物,旨在为糖尿病创面的诊断和治疗提供参考。
1. 材料与方法
本实验研究经山东大学第二医院（以下简称本单位）科研伦理委员会批准通过,批号：KYLL-2024049,遵循国家和本单位有关实验动物管理和使用的规定。
1.1 动物及主要试剂与仪器来源
6只8周龄健康无特殊病原体级、体重200~250 g的雄性SD大鼠购自济南朋悦实验动物繁育有限公司,许可证号：SCXK（鲁）2022-0006。多聚甲醛通用型组织固定液购自北京兰杰柯科技有限公司,HE和Masson染色试剂、STZ、柠檬酸钠缓冲液均购自北京索莱宝科技有限公司。C13210-01型数字切片扫描仪购自日本滨松公司。
1.2 糖尿病创面模型的构建
1.2.1 糖尿病大鼠模型的构建
取6只大鼠,按照随机数字表法分为对照组和糖尿病组,每组3只。禁食12 h后,糖尿病组大鼠以30 mg/kg剂量腹腔注射10 mg/mL的STZ溶液,每天注射1次,连续注射3 d。对照组大鼠以相同的方式及频率注射等量柠檬酸钠缓冲液。2组大鼠均于末次注射后0（即刻）、7、9、11、13 d进行随机血糖检测及24 h内的体重、尿量、饮水量监测。糖尿病组大鼠随机血糖持续稳定≥16.7 mmol/L且表现出多饮、多尿、体重减轻的症状表示成功构建糖尿病大鼠模型。
1.2.2 创面模型的构建
取糖尿病组和对照组所有大鼠,采用异氟烷气体麻醉。背部皮肤常规脱毛消毒后,采用外科手术的方式,于背部正中制备1个直径2 cm的圆形全层皮肤缺损创面,使用硅胶圈及贴膜防止创面收缩。
1.3 创面愈合情况观察及取材
术后0、14 d,观察2组大鼠创面愈合情况并拍照,用Image J 1.8.0图像分析软件（美国国立卫生研究院）分析创面面积并计算术后14 d创面愈合率。术后14 d创面愈合率=（术后0 d创面面积-术后14 d创面面积）÷术后0 d创面面积×100%。术后14 d,观察创面愈合情况后,取创面及距创缘5 mm范围内的皮肤组织,并沿直径切开,一半组织用液氮冻存,用于能量代谢组学检测；另一半组织用多聚甲醛固定,用于组织病理学情况观察。
1.4 组织病理学情况观察
取2组大鼠术后14 d的创面组织,常规制作厚5 μm的石蜡切片,按照试剂盒说明书进行HE及Masson染色,用数字切片扫描仪采集20倍放大倍数下的图像,分别观察创面上皮覆盖情况、Fb排列情况及胶原纤维形成、排列情况。
1.5 能量代谢组学检测
取2组大鼠术后14 d的创面组织,交由杭州开泰生物技术有限公司,利用超高液相色谱-质谱联用技术行能量代谢组学检测,采用核素（琥珀酸-D6）内标法进行定量分析,采用Multiquant 3.0.2软件提取色谱峰面积,利用待测物与内标物的色谱峰面积比值以及内标物的浓度,计算待测物的表达量。筛选2组大鼠创面组织间比较,表达量有显著变化（P<0.05）的差异能量代谢物。将筛选到的差异能量代谢物提交至京都基因与基因组百科全书（Kyoto encyclopedia of genes and genomes,KEGG）网站进行相关通路富集分析。
1.6 统计学处理
采用SPSS 22.0统计软件对数据进行处理。计量资料数据均符合正态分布,以
2. 结果
2.1 一般体征变化
末次注射后13 d,糖尿病组大鼠精神萎靡、烦躁好动或疲乏懒动、毛发枯燥无光泽。与对照组比较,糖尿病组大鼠末次注射后7、9、11、13 d体重均显著减轻（P<0.05）,饮水量及尿量均显著增加（P<0.05）,血糖均>16.7 mmol/L且显著升高（P<0.05）。见表1。
Table 1. 2组大鼠末次注射链脲佐菌素后各时间点一般体征比较（组别与指标 鼠数（只） 0 d（即刻） 7 d 9 d 11 d 13 d 对照组 3 体重（g） 242.4±2.8 257.6±2.9 260.7±5.0 268.7±2.4 273.7±4.1 饮水量（mL） 17±3 20±3 19±3 22±4 22±6 尿量（g） 17.8±1.7 18.0±3.9 17.5±2.8 22.3±3.1 18.8±2.9 血糖（mmol/L） 5.68±0.32 5.55±0.17 5.82±0.47 5.86±0.10 5.58±0.23 糖尿病组 3 体重（g） 240.3±3.1 213.6±4.3 210.7±5.7 208.9±3.1 204.4±2.3 饮水量（mL） 18±3 55±8 60±3 54±6 57±6 尿量（g） 16.8±1.3 57.8±5.8 54.1±8.4 57.6±9.0 57.2±5.2 血糖（mmol/L） 5.48±0.26 19.27±1.48 20.35±0.95 20.75±0.51 20.03±0.29 t1值 0.85 14.65 11.47 26.05 25.87 P1值 0.441 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 t2值 0.26 6.87 16.72 7.70 7.01 P2值 0.806 0.002 <0.001 0.002 0.002 t3值 0.83 9.83 7.14 6.43 11.10 P3值 0.456 <0.001 0.002 0.003 <0.001 t4值 0.86 15.93 23.81 49.69 66.47 P4值 0.438 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 注：糖尿病组大鼠注射链脲佐菌素构建糖尿病模型,对照组大鼠注射柠檬酸钠缓冲液；体重、饮水量、尿量、血糖时间因素主效应,F值分别为5.03、19.55、18.00、148.80,P值分别为0.059、<0.001、<0.001、<0.001；处理因素主效应,F值分别为367.40、589.00、493.60、4 582.00,P值均<0.001；两者交互作用,F值分别为143.00、14.20、15.51、147.20,P值均<0.001；t1值、P1值,t2值、P2值,t3值、P3值,t4值、P4值分别为2组各时间点体重、饮水量、尿量、血糖比较所得 2.2 创面愈合情况及组织病理学情况
术后14 d,对照组大鼠创面基本愈合,糖尿病组大鼠部分创面尚未愈合；糖尿病组大鼠创面愈合率为（68.3±2.8）%,显著低于对照组的（98.1±1.2）%（t=16.92,P<0.001）。
术后14 d,对照组大鼠创面基本被新生上皮覆盖,创面组织内Fb排列紧密,胶原纤维丰富、排列有序；糖尿病组大鼠创面上皮大片缺如,创面组织内Fb排列紊乱,胶原纤维稀疏、排列杂乱。见图1。
图 1 2组大鼠术后各时间点全层皮肤缺损创面愈合情况及组织病理学情况。1A、1B.分别为对照组术后0（即刻）、14 d创面情况,图1B中创面基本愈合；1C、1D.分别为糖尿病组术后0、14 d创面情况,图1D中仍有较大面积创面未愈合；1E、1F.分别为对照组、糖尿病组术后14 d创面上皮化情况,图1E中创面基本被新生上皮覆盖,图1F中创面尚未完全被新生上皮覆盖 苏木精-伊红×20；1G、1H.分别为对照组、糖尿病组术后14 d创面组织中胶原纤维形成和排列情况,图1G中胶原纤维丰富、排列有序,图1H中胶原纤维稀疏、排列杂乱 Masson×20注：糖尿病组大鼠诱导糖尿病后通过外科手术制备创面,对照组大鼠仅同前制备创面；红色箭头表示新生上皮,胶原纤维阳性染色为蓝色2.3 能量代谢物表达量
术后14 d,与对照组相比,糖尿病组大鼠创面组织中三羧酸循环（tricarboxylic acid cycle,TAC）过程中的顺乌头酸、烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸（nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADP）、5'-鸟苷二磷酸（5'-guanosine diphosphate,GDP）表达量均显著升高（P<0.05）,L-苹果酸表达量显著降低（P<0.05）；糖酵解途径中的乳酸表达量显著降低（P<0.05）；另外21种能量代谢物表达量变化不明显（P>0.05）。见表2。
Table 2. 2组大鼠术后14 d全层皮肤缺损创面组织中检测出的能量代谢物的表达量比较（μmol/g,组别 样本数 乳酸 顺乌头酸 5'-鸟苷二磷酸 L-苹果酸 NADP 硫胺素焦磷酸 5'-腺苷三磷酸 5'-腺苷二磷酸 对照组 3 19 383±876 20.1±2.1 2.115±0.027 225±15 9.9±2.6 3.73±0.39 15.3±1.9 5.12±0.22 糖尿病组 3 10 261±953 26.4±0.8 2.659±0.235 194±5 14.5±0.5 4.32±0.28 18.1±1.3 5.75±0.50 t值 12.20 4.74 3.99 3.45 3.09 2.11 2.10 1.98 P值 <0.001 0.009 0.016 0.026 0.037 0.103 0.103 0.119 注：糖尿病组大鼠诱导糖尿病后通过外科手术制备创面,对照组大鼠仅同前制备创面；NADP为烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸,NAD为烟酰胺腺嘌呤二核苷酸,PEP为磷酸烯醇式丙酮酸 2.4 KEGG富集分析结果
5种差异能量代谢物主要在胰高血糖素、Rap1、Ras、缺氧诱导因子1（hypoxia-inducible factor 1, HIF-1）信号通路及TAC、丙酮酸代谢、线粒体自噬、胞吞作用途径中显著富集,见图2。其中线粒体自噬、胞吞作用途径及Rap1、Ras信号通路主要有GDP富集,丙酮酸代谢途径、胰高血糖素信号通路主要有L-苹果酸和乳酸富集,TAC途径主要有顺乌头酸、L-苹果酸富集,HIF-1信号通路主要有乳酸富集。
图 2 2组大鼠术后14 d全层皮肤缺损创面组织中5种差异能量代谢物的京都基因与基因组百科全书富集分析结果注：糖尿病组大鼠诱导糖尿病后通过外科手术制备创面,对照组大鼠仅同前制备创面；HIF-1为缺氧诱导因子13. 讨论
研究表明,糖尿病会影响大鼠创面愈合[5]。本研究构建了糖尿病大鼠创面模型,结果显示糖尿病组大鼠创面愈合速度较对照组明显减慢,这与先前的结论[6]一致。组织病理学检测结果显示,糖尿病组大鼠创面组织中Fb排列紊乱、胶原纤维数量减少且排列杂乱,这些都是导致创面愈合困难的重要因素。研究显示,在糖尿病小鼠及恒河猴等动物模型中存在显著的能量代谢障碍[7],能量代谢受损会导致创面愈合困难[8, 9]。于是本研究进行能量代谢组学检测,筛选出了糖尿病组大鼠较对照组大鼠创面组织中有明显变化的5种能量代谢物：乳酸、L-苹果酸、顺乌头酸、5'-鸟苷二磷酸、NADP。KEGG富集分析显示,这些差异能量代谢物在胰高血糖素、Rap1、Ras、HIF-1信号通路及TAC、丙酮酸代谢、线粒体自噬、胞吞作用途径中显著富集。
乳酸是糖酵解的最终产物。KEGG富集分析显示,乳酸参与胰高血糖素、HIF-1信号通路及丙酮酸代谢途径。高强度运动导致的乳酸增加可以改善2型糖尿病大鼠胰岛素抵抗,从而降低血糖[10]。糖尿病小鼠体内的高胰岛素水平会激活糖异生,从而增加乳酸的消耗[11]。乳酸减少通常提示丙酮酸代谢的紊乱,从而影响能量产生和线粒体功能[12]。乳酸减少也可影响细胞对缺氧的响应,干扰缺氧条件下HIF-1的活化,进而阻碍创面愈合过程中的血管生成和细胞增殖[13]。此外,乳酸还参与调节免疫细胞的清除过程[7],外源性乳酸的应用已被证实能够促进糖尿病小鼠创面组织中新生血管形成及创面再上皮化[14]。本研究结果显示,糖尿病组大鼠创面组织中乳酸表达量较对照组显著下降。然而,也有研究者在糖尿病患者足部溃疡渗出液中检测到较高的乳酸表达量[15]。糖尿病创面组织中乳酸表达量可能与创面愈合的阶段、感染是否存在以及糖尿病的基础治疗方法有关[16]。
L-苹果酸作为TAC的中间体,通过转化为异柠檬酸来促进循环进行[17]。本研究KEGG富集分析显示,L-苹果酸参与胰高血糖素信号通路及TAC、丙酮酸代谢途径等。有研究表明,L-苹果酸单体的降解产物通过进入线粒体并参与TAC来调节代谢微环境,从而提高细胞内ATP水平,促进Ⅰ型胶原、纤维连接蛋白、α平滑肌肌动蛋白等ECM的合成,从而促进大鼠创面愈合[18]。L-苹果酸是一种天然有机酸,具有增强线粒体呼吸[19]、抗氧化[20]和增强羧酸盐代谢[21]等作用。L-苹果酸通过影响TAC途径、胰高血糖素信号通路及丙酮酸代谢途径调控葡萄糖水平[22, 23]。糖尿病大鼠的肝脏[24]以及1型糖尿病患者的周围神经[25]中L-苹果酸的表达量显著减少。外源性应用L-苹果酸铬复合物能够降低四氧嘧啶诱导的糖尿病大鼠血糖和血脂水平[26]。本研究结果显示,糖尿病大鼠创面组织中L-苹果酸的表达量较对照组明显降低,说明L-苹果酸的表达量降低可能是糖尿病创面愈合缓慢的原因之一。
顺乌头酸在糖尿病创面愈合中的作用尚不清楚。本研究KEGG富集分析显示,顺乌头酸主要与TAC相关。顺乌头酸在线粒体中经过顺乌头酸脱羧酶1催化脱羧产生衣康酸（itaconic acid）,衣康酸被认为是能量代谢中最突出的免疫代谢物[27],而糖尿病溃疡创面通常伴有细菌感染[28]。研究表明,衣康酸盐是在巨噬细胞内由顺乌头酸盐通过TAC生成的,以LPS为代表的多种激活因子会触发这一转化过程[29]。衣康酸在细菌感染中起着2种不同的作用。一方面,衣康酸具有很好的抗炎作用,可以抑制细菌（如金黄色葡萄球菌）生长[29, 30],促进巨噬细胞向M2型极化,促进糖尿病小鼠创面愈合[31]；另一方面,衣康酸也可以诱导金黄色葡萄球菌等细菌出现耐受性[32, 33]。本研究检测到糖尿病大鼠创面组织中顺乌头酸的积累,这看似与其免疫代谢物衣康酸的抗炎功能相违背,但是糖尿病创面愈合过程远比想象的复杂。顺乌头酸的积聚一方面说明糖尿病导致皮肤组织细胞中线粒体功能受损；另一方面,在高血糖的条件下,衣康酸长期处于高水平导致细菌产生耐受性,创面环境中促炎-抗炎平衡紊乱,进一步恶化创面愈合微环境。
GDP是鸟苷三磷酸（guanosine triphosphate,GTP）的直接前体,GTP在细胞内负责能量传递和信号转导。本研究KEGG富集分析显示,GDP与线粒体自噬、胞吞过程、Rap1及Ras信号通路相关。Rab蛋白是一类小GTP酶,参与细胞内的膜运输,与细胞内吞及自噬功能密切相关,而GDP与GTP的动态循环调节则直接影响Rab蛋白的活性[34, 35]。G蛋白偶联受体的信号转导在生物体的生命活动中占有重要地位,Ras与Rap1作为经典的G蛋白,在细胞内存在2种状态：一种是与GDP结合的非活性状态,另一种是与GTP结合的活性状态。当Ras、Rap1与GTP结合后,会激活下游的相关通路,促进细胞增殖和分化等过程。然而,在高血糖环境下,由于胰岛素抵抗的影响,GDP与GTP的转换过程会出现异常,导致GDP的累积,使更多的G蛋白保持非活性状态,无法有效传递信号[36]。本研究在糖尿病大鼠创面组织中检测到GDP的大量累积,GTP和GDP动态平衡被打破,这意味着创面组织中能量供应不足、G蛋白偶联信号转导受到干扰,影响包括胞吞在内的诸多信号转导过程。
NADP亦被称为辅酶Ⅱ,是细胞能量代谢中不可或缺的关键成分,其还原形式还原型NADP（reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH）在多种合成代谢反应中发挥着重要作用,而葡萄糖-6-磷酸脱氢酶是NADPH合成的关键酶之一。研究显示,在高血糖或存在糖尿病的情况下,大鼠肝脏、肾脏、脑组织和内皮细胞、红细胞等及人胰岛组织中的葡萄糖-6-磷酸脱氢酶活性显著降低[37, 38, 39, 40]。这种活性降低导致NADPH的产生受阻,使细胞内NADP的表达量增加。因此,NADP的上调在一定程度上反映了糖尿病创面组织中抗氧化需求的增加[41]。
本研究分析了糖尿病大鼠创面组织的能量代谢特征,并取得了一些有意义的结果。检测到5种差异能量代谢物,这些差异能量代谢物的功能涉及能量调控、氧化应激和炎症反应等过程。其中,乳酸和L-苹果酸由于直接参与能量代谢和糖异生过程,对创面愈合的影响较大,因此在糖尿病创面的诊断和治疗中具有更显著的意义。顺乌头酸、GDP和NADP对糖尿病创面组织的能量代谢调控及创面修复也很重要,但它们的影响可能更为间接。
本研究存在一些局限性,如每组仅有3个样本,这在一定程度上限制了研究的深度和广度,但是本研究通过检测大鼠模型的稳定性来尽可能地减少这一局限导致的结果偏倚。在后续的研究中,本研究团队将通过离体及在体实验进一步验证本研究结果的可靠性,更全面地探索糖尿病大鼠创面组织的能量代谢特征及其在创面愈合过程中的作用机制。
刘馨竹：设计并开展实验、分析数据以及撰写论文；李大伟、蒋敏、李志生、冯柏塨：开展实验、分析数据；申传安：指导研究、修改论文、获取研究经费所有作者均声明不存在利益冲突 -
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图 1 2组小鼠伤后24 h行腹腔糖耐量实验和口服糖耐量实验后的血糖浓度-时间变化曲线。1A.腹腔糖耐量实验；1B.口服糖耐量实验
注：烧伤组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤；每组6只小鼠,取各时间点均值绘制曲线,曲线与横坐标围成的图形的面积为曲线下面积
图 2 2组小鼠伤后24 h回肠组织中L细胞GLP-1表达及凋亡情况 四甲基异硫氰酸罗丹明-异硫氰酸荧光素-4',6-二脒基-2-苯基吲哚×100。2A.假伤组,GLP-1表达较多,凋亡细胞较少；2B.烧伤组,GLP-1表达少于图2A,凋亡细胞多于图2A
注：烧伤组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤；胰高血糖素样肽1（GLP-1）阳性染色为红色,凋亡细胞阳性染色为绿色,细胞核阳性染色为蓝色
图 3 蛋白质印迹法检测的3组小鼠伤后24 h胰岛中内质网应激相关蛋白表达情况
注：烧伤组和烧伤+艾塞那肽4（Ex-4）组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤,于烧伤+Ex-4组小鼠伤后给予其Ex-4；BIP为重链结合蛋白,eIF2α为真核翻译起始因子2α,p-eIF2α为磷酸化eIF2α,PERK为蛋白激酶R样内质网激酶,p-PERK为磷酸化PERK,CHOP为CCAAT/增强子结合蛋白同源蛋白；条带上方1、2、3分别指示假伤组、烧伤组、烧伤+Ex-4组
Table 1. 2组小鼠伤后24 h经腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液前后血浆胰岛素水平比较（pg/mg,
组别 样本数 腹腔注射 灌胃 前 后30 min 后60 min 后120 min 前 后30 min 后60 min 后120 min 假伤组 3 6.03±1.97 12.06±2.08 11.67±1.58 8.73±2.97 5.63±2.92 31.93±7.99 32.19±5.99 26.13±3.49 烧伤组 3 1.83±0.31 7.60±2.17 5.07±0.21 2.20±1.01 1.85±0.31 12.23±2.73 19.94±4.99 15.25±4.29 P值 0.042 0.029 0.001 0.001 0.809 <0.001 0.020 0.043 注：烧伤组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤；以血浆中胰岛素浓度与血浆总蛋白浓度的比值表示胰岛素水平；腹腔注射的处理因素主效应,F=57.23,P<0.001；时间因素主效应,F=13.88,P<0.001；两者交互作用,F=0.80,P=0.508；灌胃的处理因素主效应,F=38.04,P<0.001；时间因素主效应,F=27.27,P<0.001；两者交互作用,F=2.98,P=0.063 
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Table 2. 2组小鼠伤后24 h经腹腔注射或灌胃给予葡萄糖溶液前后血浆GLP-1水平比较（pg/mg,
组别 样本数 腹腔注射 灌胃 前 后30 min 后60 min 后120 min 前 后30 min 后60 min 后120 min 假伤组 3 14.23±0.69 15.55±2.42 17.06±2.40 13.99±0.09 14.93±0.06 34.20±4.66 30.95±3.96 18.28±1.05 烧伤组 3 10.11±1.92 13.08±0.89 14.25±0.63 13.41±0.20 9.33±0.76 20.32±1.14 19.72±2.02 12.98±1.71 P值 0.013 0.200 0.118 0.981 0.049 <0.001 <0.001 0.066 注：烧伤组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤；以血浆中胰高血糖素样肽1（GLP-1）浓度与血浆总蛋白浓度的比值表示GLP-1水平；腹腔注射处理因素主效应,F=17.62,P<0.001；时间因素主效应,F=5.92,P=0.006；两者交互作用,F=1.50,P=0.252；灌胃的处理因素主效应,F=82.05,P<0.001；时间因素主效应,F=54.69,P<0.001；两者交互作用,F=4.55,P=0.017
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Table 3. 3组小鼠伤后24 h胰岛中内质网应激相关蛋白表达水平比较（
组别 样本数 BIP p-PERK/PERK p-eIF2α/eIF2α CHOP 假伤组 3 1.00±0.10 1.01±0.10 1.00±0.11 1.00±0.10 烧伤组 3 2.03±0.16 2.45±0.11 1.87±0.07 2.19±0.24 烧伤+Ex-4组 3 1.31±0.09 1.93±0.08 1.28±0.16 1.65±0.21 F值 59.29 178.50 44.82 28.41 P值 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 P1值 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 P2值 <0.001 <0.001 <0.001 0.025 注：烧伤组和烧伤+艾塞那肽4（Ex-4）组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤,于烧伤+Ex-4组小鼠伤后给予其Ex-4；P1值为烧伤组与假伤组比较所得,P2值为烧伤+Ex-4组与烧伤组比较所得；BIP为重链结合蛋白,PERK为蛋白激酶R样内质网激酶,p-PERK为磷酸化PERK,eIF2α为真核翻译起始因子2α,p-eIF2α为磷酸化eIF2α,CHOP为CCAAT/增强子结合蛋白同源蛋白
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Table 4. 3组小鼠伤后24 h经低糖和高糖孵育的胰岛上清液中胰岛素水平比较（ng/mg,
组别 样本数 低糖孵育 高糖孵育 假伤组 6 5.0±0.5 16.2±0.6 烧伤组 6 4.9±0.8 8.9±0.8 烧伤+Ex-4组 6 5.0±0.9 12.7±1.3 F值 0.04 89.20 P值 0.970 <0.001 P1值 — <0.001 P2值 — <0.001 注：烧伤组和烧伤+艾塞那肽4（Ex-4）组小鼠为30%体表总面积Ⅲ度烫伤,假伤组小鼠模拟致假伤,于烧伤+Ex-4组小鼠伤后给予其Ex-4；P1值为烧伤组与假伤组比较所得；P2值为烧伤+Ex-4组与烧伤组比较所得；低糖指2.8 mmol/L葡萄糖,高糖指16.7 mmol/L葡萄糖；“—”表示无此项
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