留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

硫氧还蛋白还原酶1对脓毒症小鼠树突状细胞铁死亡及免疫功能的影响

周岐原 李京宴 曹彦敏 李伟玲 董宁 吴瑶 田英平 姚咏明

周岐原, 李京宴, 曹彦敏, 等. 硫氧还蛋白还原酶1对脓毒症小鼠树突状细胞铁死亡及免疫功能的影响[J]. 中华烧伤与创面修复杂志, 2025, 41(3): 212-221. DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20241118-00451.
引用本文: 周岐原, 李京宴, 曹彦敏, 等. 硫氧还蛋白还原酶1对脓毒症小鼠树突状细胞铁死亡及免疫功能的影响[J]. 中华烧伤与创面修复杂志, 2025, 41(3): 212-221. DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20241118-00451.
Zhou QY,Li JY,Cao YM,et al.Effects of thioredoxin reductase 1 on ferroptosis and immune function of dendritic cells in septic mice[J].Chin J Burns Wounds,2025,41(3):212-221.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20241118-00451.
Citation: Zhou QY,Li JY,Cao YM,et al.Effects of thioredoxin reductase 1 on ferroptosis and immune function of dendritic cells in septic mice[J].Chin J Burns Wounds,2025,41(3):212-221.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20241118-00451.

硫氧还蛋白还原酶1对脓毒症小鼠树突状细胞铁死亡及免疫功能的影响

doi: 10.3760/cma.j.cn501225-20241118-00451
基金项目: 

国家自然科学基金重点项目 82241062

国家自然科学基金青年科学基金项目 82302412

河北省自然科学基金 H2023206202

北京市自然科学基金 7244296

详细信息
    通讯作者:

    田英平,Email:tianyingping-jzh@163.com

    姚咏明,Email:c_ff@sina.com

Effects of thioredoxin reductase 1 on ferroptosis and immune function of dendritic cells in septic mice

Funds: 

Key Program of National Natural Science Foundation of China 82241062

Youth Science Fund Program of National Natural Science Foundation of China 82302412

Hebei Natural Science Foundation H2023206202

Beijing Municipal Natural Science Foundation 7244296

More Information
  • 摘要:   目的  探讨硫氧还蛋白还原酶1(TXNRD1)对脓毒症小鼠树突状细胞(DC)铁死亡及免疫功能的影响,为改善创面感染等引起的脓毒症免疫抑制提供依据。  方法  该研究为实验研究。取60只6~8周龄雄性C57BL/6J小鼠,对其行盲肠结扎穿孔(CLP)构建脓毒症模型,分别于CLP术后0(即刻)、6、12、24、48、72 h采用随机数字表法选取10只小鼠,采用CD11c阳选磁珠提取小鼠脾脏DC,采用蛋白质印迹法检测细胞中TXNRD1及抗铁死亡蛋白溶质载体家族7成员11(SLC7A11)、谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)蛋白表达,采用比色法检测细胞中还原型谷胱甘肽含量,采用活细胞成像技术检测细胞脂质过氧化水平,采用流式细胞术检测主要组织相容性复合体Ⅱ类亚型I-A/I-E和白细胞分化抗原CD80、CD86水平。另取100只6~8周龄雄性C57BL/6J小鼠,采用随机数字表法将其分为玉米油+假伤组、玉米油+CLP组、抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组,每组25只。对2个抑制剂组小鼠行TXNRD1抑制剂金诺芬腹腔注射,对2个玉米油组小鼠行玉米油腹腔注射,1 h后对2个CLP组小鼠行CLP术构建脓毒症模型,对2个假伤组小鼠行假手术。从4组小鼠中各取20只,观察其术后7 d内存活情况并计算存活率;术后24 h同前提取4组分别剩余的5只小鼠的脾脏DC并行相应检测。  结果  与CLP术后0 h比较,小鼠CLP术后24 h细胞中TXNRD1、GPX4与SLC7A11蛋白表达及CLP术后48 h细胞中TXNRD1蛋白表达均显著降低(P<0.05),小鼠CLP术后24、48 h细胞中还原型谷胱甘肽含量均显著降低(P<0.05)。小鼠CLP术后0、6、12 h细胞脂质过氧化水平低,稍低于CLP术后72 h;CLP术后24、48 h细胞脂质过氧化水平显著高于CLP术后0、6、12、72 h。与CLP术后0 h比较,小鼠CLP术后6、12、24、48、72 h细胞中I-A/I-E、CD80水平及CLP术后12、24、48 h细胞中CD86水平均显著升高(P<0.05)。术后24 h,玉米油+CLP组小鼠细胞中TXNRD1、SLC7A11与GPX4蛋白表达均显著低于玉米油+假伤组(P<0.05),抑制剂+CLP组小鼠细胞中TXNRD1、SLC7A11与GPX4蛋白表达均显著低于玉米油+CLP组、抑制剂+假伤组(P<0.05)。术后24 h,玉米油+CLP组小鼠细胞中还原型谷胱甘肽含量为(239±32)μg/mg,显著低于玉米油+假伤组的(366±59)μg/mg(P<0.05);抑制剂+CLP组小鼠细胞中还原型谷胱甘肽含量为(134±19)μg/mg,显著低于抑制剂+假伤组的(355±31)μg/mg及玉米油+CLP组(P值均<0.05)。术后24 h,抑制剂+CLP组小鼠细胞脂质过氧化水平显著高于其余3组。术后24 h,玉米油+CLP组小鼠细胞中I-A/I-E、CD80、CD86水平均显著高于玉米油+假伤组(P<0.05),抑制剂+CLP组小鼠细胞中I-A/I-E、CD80水平均显著高于抑制剂+假伤组(P<0.05)但均显著低于玉米油+CLP组(P<0.05),抑制剂+假伤组小鼠细胞中CD86水平显著高于玉米油+假伤组(P<0.05)。术后7 d内,抑制剂+CLP组小鼠存活率显著低于抑制剂+假伤组与玉米油+CLP组(χ2值分别为31.19、3.91,P值均<0.05)。  结论  脓毒症小鼠DC中TXNRD1表达降低,细胞铁死亡增强且免疫功能减弱;抑制DC中TXNRD1将加重细胞铁死亡及免疫功能抑制,且与脓毒症预后不良密切相关。

     

  • 参考文献(40)

    [1] LiuD,HuangSY,SunJH,et al.Sepsis-induced immunosuppression: mechanisms, diagnosis and current treatment options[J].Mil Med Res,2022,9(1):56.DOI: 10.1186/s40779-022-00422-y.
    [2] RuddKE,JohnsonSC,AgesaKM,et al.Global, regional, and national sepsis incidence and mortality, 1990-2017: analysis for the Global Burden of Disease Study[J].Lancet,2020,395(10219):200-211.DOI: 10.1016/S0140-6736(19)32989-7.
    [3] Martin-LoechesI,SingerM,LeoneM.Sepsis: key insights, future directions, and immediate goals. A review and expert opinion[J].Intensive Care Med,2024,50(12):2043-2049.DOI: 10.1007/s00134-024-07694-z.
    [4] DarkwahS,NagoN,AppiahMG,et al.Differential roles of dendritic cells in expanding CD4 T cells in sepsis[J].Biomedicines,2019,7(3):52.DOI: 10.3390/biomedicines7030052.
    [5] MaierB,LeaderAM,ChenST,et al.Author correction: a conserved dendritic-cell regulatory program limits antitumour immunity[J].Nature,2020,582(7813):E17.DOI: 10.1038/s41586-020-2326-5.
    [6] BosteelsC,NeytK,VanheerswynghelsM,et al.Inflammatory type 2 cDCs acquire features of cDC1s and macrophages to orchestrate immunity to respiratory virus infection[J].Immunity,2020,52(6):1039-1056.e9.DOI: 10.1016/j.immuni.2020.04.005.
    [7] CarrollSL,PasareC,BartonGM.Control of adaptive immunity by pattern recognition receptors[J].Immunity,2024,57(4):632-648.DOI: 10.1016/j.immuni.2024.03.014.
    [8] YaoRQ,LiZX,WangLX,et al.Single-cell transcriptome profiling of the immune space-time landscape reveals dendritic cell regulatory program in polymicrobial sepsis[J].Theranostics,2022,12(10):4606-4628.DOI: 10.7150/thno.72760.
    [9] LiuN,JiangC,CaiP,et al.Single-cell analysis of COVID-19, sepsis, and HIV infection reveals hyperinflammatory and immunosuppressive signatures in monocytes[J].Cell Rep,2021,37(1):109793.DOI: 10.1016/j.celrep.2021.109793.
    [10] GongT,LiuYT,FanJ.Exosomal mediators in sepsis and inflammatory organ injury: unraveling the role of exosomes in intercellular crosstalk and organ dysfunction[J].Mil Med Res,2024,11(1):24.DOI: 10.1186/s40779-024-00527-6.
    [11] JiangX,StockwellBR,ConradM.Ferroptosis: mechanisms, biology and role in disease[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2021,22(4):266-282.DOI: 10.1038/s41580-020-00324-8.
    [12] ZengF,NijiatiS,TangL,et al.Ferroptosis detection: from approaches to applications[J].Angew Chem Int Ed Engl,2023,62(35):e202300379.DOI: 10.1002/anie.202300379.
    [13] LiJY,RenC,WangLX,et al.Sestrin2 protects dendrite cells against ferroptosis induced by sepsis[J].Cell Death Dis,2021,12(9):834.DOI: 10.1038/s41419-021-04122-8.
    [14] 吴梦瑶,贺鹏翼,段昱,等.干扰素基因刺激因子对脓毒症状态下小鼠树突状细胞内酰基辅酶A合成酶长链家族成员4介导铁死亡的影响[J].中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(10):920-929.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20240518-00184.
    [15] MuriJ,KopfM.The thioredoxin system: balancing redox responses in immune cells and tumors[J].Eur J Immunol,2023,53(1):e2249948.DOI: 10.1002/eji.202249948.
    [16] YodoiJ,MatsuoY,TianH,et al.Anti-inflammatory thioredoxin family proteins for medicare, healthcare and aging care[J].Nutrients,2017,9(10):1081.DOI: 10.3390/nu9101081.
    [17] Xinastle-CastilloLO,LandaA.Physiological and modulatory role of thioredoxins in the cellular function[J].Open Med (Wars),2022,17(1):2021-2035.DOI: 10.1515/med-2022-0596.
    [18] HaoX,ZhaoB,TowersM,et al.TXNRD1 drives the innate immune response in senescent cells with implications for age-associated inflammation[J].Nat Aging,2024,4(2):185-197.DOI: 10.1038/s43587-023-00564-1.
    [19] MorgensternC,Lastres-BeckerI,DemirdöğenBC,et al.Biomarkers of NRF2 signalling: current status and future challenges[J].Redox Biol,2024,72:103134.DOI: 10.1016/j.redox.2024.103134.
    [20] 周岐原,李京宴,姚咏明,等.脱嘌呤/脱嘧啶脱氧核糖核酸内切酶1对模拟脓毒症状态下小鼠树突状细胞铁死亡的作用[J].中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(10):930-939.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20240430-00159.
    [21] YangL,WangH,YangX,et al.Auranofin mitigates systemic iron overload and induces ferroptosis via distinct mechanisms[J].Signal Transduct Target Ther,2020,5(1):138.DOI: 10.1038/s41392-020-00253-0.
    [22] HuZ,TengXL,ZhangT,et al.SENP3 senses oxidative stress to facilitate STING-dependent dendritic cell antitumor function[J].Mol Cell,2021,81(5):940-952.e5.DOI: 10.1016/j.molcel.2020.12.024.
    [23] LuZQ,ZhangC,ZhaoLJ,et al.Matrix metalloproteinase-8 regulates dendritic cell tolerance in late polymicrobial sepsis via the nuclear factor kappa-B p65/β-catenin pathway[J/OL].Burns Trauma,2024,12:tkad025[2024-11-18].https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38425412/.DOI: 10.1093/burnst/tkad025.
    [24] WangG,LiX,ZhangL,et al.Crosstalk between dendritic cells and immune modulatory agents against sepsis[J].Genes (Basel),2020,11(3):323.DOI: 10.3390/genes11030323.
    [25] 白晓智,陶克,刘洋,等.人脂肪间充质干细胞外泌体对脓毒症小鼠急性肺损伤的影响及其机制[J].中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(12):1132-1142.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20240927-00355.
    [26] NakamuraT,NaguroI,IchijoH.Iron homeostasis and iron-regulated ROS in cell death, senescence and human diseases[J].Biochim Biophys Acta Gen Subj,2019,1863(9):1398-1409.DOI: 10.1016/j.bbagen.2019.06.010.
    [27] LiuQ,WuJ,ZhangX,et al.Iron homeostasis and disorders revisited in the sepsis[J].Free Radic Biol Med,2021,165:1-13.DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.01.025.
    [28] 张浩,官浩,汪宇航,等.铁死亡在大鼠烧冲复合伤合并急性肺损伤中的作用及其机制[J].中华烧伤与创面修复杂志,2024,40(11):1034-1042.DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20240528-00199.
    [29] BallDP,TsamouriLP,WangAE,et al.Oxidized thioredoxin-1 restrains the NLRP1 inflammasome[J].Sci Immunol,2022,7(77):eabm7200.DOI: 10.1126/sciimmunol.abm7200.
    [30] Sönmez AydınF,HukkamlıB,BudakH.Coaction of hepatic thioredoxin and glutathione systems in iron overload-induced oxidative stress[J].J Biochem Mol Toxicol,2021,35(4):e22704.DOI: 10.1002/jbt.22704.
    [31] ZhongY,LiuJ,ChengX,et al.Design, synthesis and biological evaluations of diverse Michael acceptor-based phenazine hybrid molecules as TrxR1 inhibitors[J].Bioorg Chem,2021,109:104736.DOI: 10.1016/j.bioorg.2021.104736.
    [32] BaiL,YanF,DengR,et al.Thioredoxin-1 rescues MPP+/MPTP-induced ferroptosis by increasing glutathione peroxidase 4[J].Mol Neurobiol,2021,58(7):3187-3197.DOI: 10.1007/s12035-021-02320-1.
    [33] SoulaM,WeberRA,ZilkaO,et al.Metabolic determinants of cancer cell sensitivity to canonical ferroptosis inducers[J].Nat Chem Biol,2020,16(12):1351-1360.DOI: 10.1038/s41589-020-0613-y.
    [34] HuJ,ChengM,JiangC,et al.Deferoxamine mitigates ferroptosis and inflammation in hippocampal neurons after subarachnoid hemorrhage by activating the Nrf2/TXNRD1 axis[J].Mol Neurobiol,2024,61(2):1044-1060.DOI: 10.1007/s12035-023-03525-2.
    [35] HsiehMS,LingHH,SetiawanSA,et al.Therapeutic targeting of thioredoxin reductase 1 causes ferroptosis while potentiating anti-PD-1 efficacy in head and neck cancer[J].Chem Biol Interact,2024,395:111004.DOI: 10.1016/j.cbi.2024.111004.
    [36] ZhengLY,DuanY,HePY,et al.Dysregulated dendritic cells in sepsis: functional impairment and regulated cell death[J].Cell Mol Biol Lett,2024,29(1):81.DOI: 10.1186/s11658-024-00602-9.
    [37] CollinM,BigleyV.Human dendritic cell subsets: an update[J].Immunology,2018,154(1):3-20.DOI: 10.1111/imm.12888.
    [38] MacriC,PangES,PattonT,et al.Dendritic cell subsets[J].Semin Cell Dev Biol,2018,84:11-21.DOI: 10.1016/j.semcdb.2017.12.009.
    [39] FlohéSB,AgrawalH,SchmitzD,et al.Dendritic cells during polymicrobial sepsis rapidly mature but fail to initiate a protective Th1-type immune response[J].J Leukoc Biol,2006,79(3):473-481.DOI: 10.1189/jlb.0705413.
    [40] PastilleE,DidovicS,BrauckmannD,et al.Modulation of dendritic cell differentiation in the bone marrow mediates sustained immunosuppression after polymicrobial sepsis[J].J Immunol,2011,186(2):977-986.DOI: 10.4049/jimmunol.1001147.
  • 图  1  采用蛋白质印迹法检测的小鼠CLP术后各时间点脾脏树突状细胞中TXNRD1及SLC7A11与GPX4蛋白表达

    注:TXNRD1为硫氧还蛋白还原酶1,SLC7A11为溶质载体家族7成员11,GPX4为谷胱甘肽过氧化物酶4;条带上方1、2、3、4、5、6分别指示盲肠结扎穿孔(CLP)术后0(即刻)、6、12、24、48、72 h

    图  2  小鼠CLP术后各时间点脾脏树突状细胞脂质过氧化水平 BODIPY™ 581/591 C11-Hoechst 33342×126。2A、2B、2C、2D、2E、2F.分别为CLP术后0(即刻)、6、12、24、48、72 h,图2A、2B、2C中细胞脂质过氧化水平低且稍低于图2F,图2D、2E中细胞脂质过氧化水平显著高于图2A、2B、2C、2F

    注:CLP为盲肠结扎穿孔;未发生过氧化脂质染色为红色,过氧化脂质染色为绿色,细胞核染色为蓝色

    图  3  采用蛋白质印迹法检测的4组小鼠术后24 h脾脏树突状细胞中TXNRD1及SLC7A11与GPX4蛋白表达

    注:TXNRD1为硫氧还蛋白还原酶1,SLC7A11为溶质载体家族7成员11,GPX4为谷胱甘肽过氧化物酶4;条带上方1、2及3、4分别指示小鼠腹腔注射玉米油1 h后行假手术、盲肠结扎穿孔(CLP)术的玉米油+假伤组、玉米油+CLP组及小鼠腹腔注射金诺芬1 h后行假手术、CLP术的抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组

    图  4  4组小鼠术后24 h脾脏树突状细胞脂质过氧化水平 BODIPY™ 581/591 C11-Hoechst 33342×126。4A、4B、4C、4D.分别为玉米油+假伤组、玉米油+CLP组、抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组,图4A、4C中细胞脂质过氧化水平低,图4B中细胞脂质过氧化水平稍高于图4A、4C,图4D中细胞脂质过氧化水平显著高于图4A、4B、4C

    注:未发生过氧化脂质染色为红色,过氧化脂质染色为绿色,细胞核染色为蓝色;玉米油+假伤组、玉米油+盲肠结扎穿孔(CLP)组小鼠腹腔注射玉米油1 h后分别行假手术、CLP术,抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组小鼠腹腔注射金诺芬1 h后分别行假手术、CLP术

    图  5  4组小鼠术后7 d内存活率(样本数为20)

    注:玉米油+假伤组、玉米油+盲肠结扎穿孔(CLP)组小鼠腹腔注射玉米油1 h后分别行假手术、CLP术,抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组小鼠腹腔注射金诺芬1 h后分别行假手术、CLP术;与玉米油+假伤组比较,aP<0.05;与抑制剂+假伤组比较,bP<0.05;与玉米油+CLP组比较,cP<0.05

    Table  1.   小鼠CLP术后各时间点脾脏树突状细胞中TXNRD1及SLC7A11与GPX4蛋白表达比较(x¯±s

    CLP术后时间点样本数TXNRD1SLC7A11GPX4
    0 h(即刻)30.983±0.0100.88±0.090.92±0.10
    6 h30.913±0.0900.79±0.090.87±0.08
    12 h30.840±0.0920.70±0.080.77±0.11
    24 h30.615±0.1170.57±0.060.55±0.09
    48 h30.660±0.1510.71±0.140.71±0.13
    72 h30.839±0.0480.77±0.120.91±0.16
    F6.663.374.54
    P0.0040.0390.015
    P10.8360.6430.959
    P20.2930.1420.401
    P30.0020.0090.008
    P40.0060.1760.145
    P50.2910.484>0.999
    注:CLP为盲肠结扎穿孔,TXNRD1为硫氧还蛋白还原酶1,SLC7A11为溶质载体家族7成员11,GPX4为谷胱甘肽过氧化物酶4;F值、P值为各时间点间各指标总体比较所得;P1值、P2值、P3值、P4值、P5值分别为CLP术后6、12、24、48、72 h与CLP术后0 h各指标比较所得
    下载: 导出CSV

    Table  2.   小鼠CLP术后各时间点脾脏树突状细胞中I-A/I-E及CD80与CD86水平比较(x¯±s

    CLP术后时间点样本数I-A/I-ECD80CD86
    0 h(即刻)31 509±160967±391 996±205
    6 h34 071±1553 908±961 895±64
    12 h36 744±4555 225±2354 753±357
    24 h35 580±4647 369±1413 563±219
    48 h34 615±2824 076±842 796±268
    72 h32 450±701 750±1001 870±251
    F122.00475.9067.94
    P<0.001<0.001<0.001
    P1<0.001<0.0010.979
    P2<0.001<0.001<0.001
    P3<0.001<0.001<0.001
    P4<0.001<0.0010.007
    P50.011<0.0010.949
    注:CLP为盲肠结扎穿孔,I-A/I-E为主要组织相容性复合体Ⅱ类亚型,CD80和CD86为白细胞分化抗原;F值、P值为各时间点间各指标总体比较所得;P1值、P2值、P3值、P4值、P5值分别为CLP术后6、12、24、48、72 h与CLP术后0 h各指标比较所得
    下载: 导出CSV

    Table  3.   4组小鼠术后24 h脾脏树突状细胞中TXNRD1及SLC7A11与GPX4蛋白表达比较(x¯±s

    组别样本数TXNRD1SLC7A11GPX4
    玉米油+假伤组30.970±0.0321.06±0.101.13±0.09
    玉米油+CLP组30.579±0.1260.60±0.110.75±0.03
    抑制剂+假伤组30.794±0.1780.79±0.041.06±0.14
    抑制剂+CLP组30.269±0.0450.25±0.120.44±0.17
    P10.0110.0020.018
    P20.002<0.001<0.001
    P30.2880.0350.849
    P40.0380.0080.045
    注:玉米油+假伤组、玉米油+CLP组小鼠腹腔注射玉米油1 h后分别行假手术、CLP术,抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组小鼠腹腔注射金诺芬1 h后分别行假手术、CLP术;TXNRD1为硫氧还蛋白还原酶1,SLC7A11为溶质载体家族7成员11,GPX4为谷胱甘肽过氧化物酶4,CLP为盲肠结扎穿孔;TXNRD1、SLC7A11、GPX4是否使用抑制剂的主效应,F值分别为14.22、32.30、8.35,P值分别为0.006、<0.001、0.020;是否进行CLP的主效应,F值分别为50.48、81.55、54.02,P值均<0.001;二者交互作用,F值分别为1.07、0.63、3.05,P值分别为0.330、0.450、0.119;P1值、P2值、P3值、P4值分别为玉米油+CLP组与玉米油+假伤组、抑制剂+CLP组与抑制剂+假伤组、抑制剂+假伤组与玉米油+假伤组、抑制剂+CLP组与玉米油+CLP组各指标比较所得
    下载: 导出CSV

    Table  4.   4组小鼠术后24 h脾脏树突状细胞中I-A/I-E及CD80与CD86水平比较(x¯±s

    组别样本数I-A/I-ECD80CD86
    玉米油+假伤组33 649±2706 241±3859 283±3 698
    玉米油+CLP组311 927±24920 103±67750 258±2 597
    抑制剂+假伤组33 463±1737 287±40449 051±3 438
    抑制剂+CLP组38 561±5069 810±32653 972±2 485
    P1<0.001<0.001<0.001
    P2<0.001<0.0010.283
    P30.8930.096<0.001
    P4<0.001<0.0010.497
    注:玉米油+假伤组、玉米油+CLP组小鼠腹腔注射玉米油1 h后分别行假手术、CLP术,抑制剂+假伤组、抑制剂+CLP组小鼠腹腔注射金诺芬1 h后分别行假手术、CLP术;I-A/I-E为主要组织相容性复合体Ⅱ类亚型,CD80和CD86为白细胞分化抗原,CLP为盲肠结扎穿孔;I-A/I-E、CD80、CD86是否使用抑制剂的主效应,F值分别为89.99、293.00、152.90,P值均<0.001;是否进行CLP的主效应,F值分别为1 276.00、920.00、170.20,P值均<0.001;二者交互作用,F值分别为72.10、440.60、102.90,P值均<0.001;P1值、P2值、P3值、P4值分别为玉米油+CLP组与玉米油+假伤组、抑制剂+CLP组与抑制剂+假伤组、抑制剂+假伤组与玉米油+假伤组、抑制剂+CLP组与玉米油+CLP组各指标比较所得
    下载: 导出CSV
  • 加载中
图(6) / 表(4)
计量
  • 文章访问数:  592
  • HTML全文浏览量:  74
  • PDF下载量:  10
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2024-11-18

目录

    /

    返回文章
    返回